| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 研究背景 | 第11-12页 |
| 1.2 糙米酵素的研究现状 | 第12-16页 |
| 1.2.1 糙米酵素的营养价值 | 第12页 |
| 1.2.2 糙米酵素的发酵工艺 | 第12-15页 |
| 1.2.3 糙米酵素的应用与前景 | 第15-16页 |
| 1.3 细胞凋亡的研究现状 | 第16-17页 |
| 1.3.1 细胞凋亡的特征 | 第16页 |
| 1.3.2 细胞凋亡的信号转导途径 | 第16-17页 |
| 1.3.3 细胞凋亡的检测方法 | 第17页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第17-18页 |
| 1.5 研究的内容和技术路线 | 第18-20页 |
| 1.5.1 糙米酵素发酵工艺的研究 | 第18页 |
| 1.5.2 糙米酵素的营养价值及发酵前后营养成分的变化 | 第18页 |
| 1.5.3 糙米酵素对小鼠海马神经元细胞凋亡的影响 | 第18-19页 |
| 1.5.4 技术路线 | 第19-20页 |
| 第二章 糙米酵素发酵工艺的研究 | 第20-36页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第20-22页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.2 主要设备 | 第21页 |
| 2.1.3 氨基酸分析仪中缓冲液和反应液的配制 | 第21-22页 |
| 2.2 方法 | 第22-23页 |
| 2.2.1 试验方案 | 第22页 |
| 2.2.2 工艺流程 | 第22-23页 |
| 2.2.3 操作要点 | 第23页 |
| 2.2.4 γ-氨基丁酸的测定 | 第23页 |
| 2.2.5 数据统计分析 | 第23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-35页 |
| 2.3.1 确定最佳发酵培养基配方 | 第23-29页 |
| 2.3.2 确定最佳发酵工艺条件 | 第29-34页 |
| 2.3.3 混菌发酵对γ-氨基丁酸的含量的影响 | 第34-35页 |
| 2.4 小结 | 第35-36页 |
| 第三章 糙米酵素营养成分的测定 | 第36-49页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第36-38页 |
| 3.1.1 主要材料 | 第36页 |
| 3.1.2 试剂 | 第36-37页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第37-38页 |
| 3.1.4 相关试剂的配制 | 第38页 |
| 3.2 方法 | 第38-44页 |
| 3.2.1 干物质的测定 | 第38页 |
| 3.2.2 蛋白质的测定 | 第38-39页 |
| 3.2.3 可溶性糖的测定 | 第39-40页 |
| 3.2.4 维生素B_1(硫胺素)的测定 | 第40-41页 |
| 3.2.5 维生素B_2(核黄素)的测定 | 第41-42页 |
| 3.2.6 淀粉的测定 | 第42-43页 |
| 3.2.7 氨基酸的测定 | 第43-44页 |
| 3.3 结果与分析 | 第44-48页 |
| 3.4 讨论 | 第48-49页 |
| 第四章 糙米酵素对小鼠海马神经元细胞凋亡的影响 | 第49-57页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第49-50页 |
| 4.1.1 主要材料 | 第49-50页 |
| 4.1.2 主要设备 | 第50页 |
| 4.1.3 细胞处理组的配制 | 第50页 |
| 4.2 方法 | 第50-52页 |
| 4.2.1 细胞的复苏 | 第50-51页 |
| 4.2.2 细胞的传代 | 第51页 |
| 4.2.3 细胞的处理 | 第51页 |
| 4.2.4 Annexin V/PI流式细胞法测细胞凋亡 | 第51页 |
| 4.2.5 统计与分析 | 第51-52页 |
| 4.3 结果与分析 | 第52-55页 |
| 4.3.1 缺氧/复氧处理对HT22细胞形态的影响 | 第52页 |
| 4.3.2 缺氧/复氧处理建立细胞凋亡模型 | 第52-54页 |
| 4.3.3 糙米酵素抑制缺氧/复氧处理诱导的细胞凋亡 | 第54-55页 |
| 4.4 讨论 | 第55-57页 |
| 第五章 全文结论与展望 | 第57-59页 |
| 5.1 全文结论 | 第57-58页 |
| 5.2 创新点与展望 | 第58-59页 |
| 5.2.1 创新点 | 第58页 |
| 5.2.2 展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 个人简历 | 第66页 |
