中文摘要 | 第2-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
第一章 绪论 | 第9-22页 |
1. 黑蒜的研究进展 | 第9-16页 |
1.1 黑蒜的加工原理及工艺研究 | 第9-12页 |
1.2 黑蒜的营养成分分析 | 第12-13页 |
1.3 黑蒜的生物性功能 | 第13-15页 |
1.4 黑蒜的深加工产品 | 第15-16页 |
2. 多酚类化合物研究现状 | 第16-19页 |
2.1 多酚类物质的提取方法 | 第16-17页 |
2.2 多酚类物质的生理活性 | 第17-19页 |
3. 天然产物体外抗氧化活性评价方法 | 第19-20页 |
3.1 体外抗氧化评价方法 | 第19页 |
3.2 细胞抗氧化评价 | 第19-20页 |
3.3 动物体内抗氧化评价 | 第20页 |
4. 本研究的目的和意义 | 第20-22页 |
4.1 本文的研究目的 | 第20页 |
4.2 本文的研究意义 | 第20-22页 |
第二章 黑蒜营养组分及抗氧化活性的研究 | 第22-35页 |
1 材料与方法 | 第22-25页 |
1.1 材料与试剂 | 第22-23页 |
1.2 仪器与设备 | 第23页 |
1.3 方法 | 第23-25页 |
2 结果与讨论 | 第25-34页 |
2.1 黑蒜加工前后营养素对照 | 第25-26页 |
2.2 GC-MS结果 | 第26-30页 |
2.3 黑蒜加工前后多酚含量的对比 | 第30页 |
2.4 黑蒜加工前后体外抗氧化活性 | 第30-34页 |
3 本章小结 | 第34-35页 |
第三章 不同粉碎方式的黑蒜粉末物理性质及抗氧化活性的对比研究 | 第35-47页 |
1 材料与方法 | 第35-39页 |
1.1 材料与试剂 | 第35页 |
1.2 仪器与设备 | 第35-36页 |
1.3 方法 | 第36-39页 |
2 结果与讨论 | 第39-46页 |
2.1 不同粉碎方式的黑蒜粒度测定结果 | 第39页 |
2.2 不同粉碎方式的黑蒜微观形态观察 | 第39-40页 |
2.3 不同粉碎方式的黑蒜物理特性研究 | 第40-41页 |
2.4 不同粉碎方式的黑蒜多酚含量的测定 | 第41-42页 |
2.5 不同粉碎方式的黑蒜提取液对DPPH的清除效果 | 第42页 |
2.6 不同粉碎方式的黑蒜提取液还原力的测定 | 第42-43页 |
2.7 不同粉碎方式的黑蒜提取液对ABTS~+自由基的清除 | 第43-44页 |
2.8 不同粉碎方式的黑蒜提取液对氧自由基的清除能力 | 第44-45页 |
2.9 不同粉碎方式的黑蒜提取液的细胞抗氧化能力 | 第45-46页 |
3. 本章小结 | 第46-47页 |
第四章 黑蒜对脂多糖诱导RAW264.7细胞自由基清除作用及对D-半乳糖致衰老小鼠的脑组织抗氧化酶活性的研究 | 第47-61页 |
1 材料与方法 | 第47-52页 |
1.1 材料与试剂 | 第47-48页 |
1.2 仪器与设备 | 第48页 |
1.3 动物 | 第48页 |
1.4 方法 | 第48-51页 |
1.5 统计学方法 | 第51-52页 |
2 结果与分析 | 第52-59页 |
2.1 黑蒜提取物对RAW 264.7细胞活力的影响 | 第52页 |
2.2 黑蒜提取物对LPS诱导RAW 264.7细胞释放NO的抑制作用 | 第52-53页 |
2.3 黑蒜对LPS诱导的RAW 264.7细胞因子活性的影响 | 第53-54页 |
2.4 黑蒜对LPS诱导的RAW 264.7细胞因子mRNA表达的影响 | 第54-56页 |
2.5 黑蒜对LPS诱导的RAW264.7细胞因子蛋白表达的影响 | 第56页 |
2.6 黑蒜对衰老小鼠脑组织中SOD和GSH-Px活性的影响 | 第56-57页 |
2.7 黑蒜对衰老小鼠脑组织中丙二醛(MDA)和蛋白质羰基(PC)含量的影响 | 第57-59页 |
3. 本章小结 | 第59-61页 |
第五章 黑蒜中活性物质化学成分的研究 | 第61-64页 |
1 材料与方法 | 第61-62页 |
1.1 材料与试剂 | 第61页 |
1.2 仪器与设备 | 第61页 |
1.3 方法 | 第61-62页 |
2 结果与分析 | 第62-63页 |
2.1 结构鉴定 | 第62-63页 |
3 本章小结 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-73页 |
致谢 | 第73-74页 |
攻读硕士期间发表的论文 | 第74-75页 |