| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第11-24页 |
| 1 立题依据 | 第11-17页 |
| 1.1 黑果枸杞研究现状 | 第11-12页 |
| 1.1.1 黑果枸杞概述 | 第11页 |
| 1.1.2 营养成分 | 第11页 |
| 1.1.3 活性成分 | 第11-12页 |
| 1.1.4 黑果枸杞的加工利用 | 第12页 |
| 1.2 抗氧化研究进展 | 第12-15页 |
| 1.2.1 氧化与自由基 | 第12-13页 |
| 1.2.2 体外抗氧化活性测定方法 | 第13-14页 |
| 1.2.3 天然抗氧化活性物质 | 第14-15页 |
| 1.2.4 天然抗氧化剂在食品中的应用 | 第15页 |
| 1.3 黑果枸杞提取物对肝细胞保护作用概述 | 第15-17页 |
| 1.3.1 细胞抗氧化评价方法 | 第15-16页 |
| 1.3.2 肝细胞氧化损伤模型 | 第16页 |
| 1.3.3 黑果枸杞对细胞氧化损伤的保护研究 | 第16-17页 |
| 2 研究的目的和意义 | 第17页 |
| 3 研究内容 | 第17-18页 |
| 4 技术路线 | 第18页 |
| 参考文献 | 第18-24页 |
| 第二章 黑果枸杞营养活性成分测定 | 第24-34页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第24页 |
| 2 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.1 黑果枸杞、红枸杞常规营养成分测定 | 第24-25页 |
| 2.2 黑果枸杞、红枸杞微量元素的分析 | 第25页 |
| 2.3 黑果枸杞、红枸杞花色苷的测定 | 第25页 |
| 2.4 黑果枸杞、红枸杞总酚的测定 | 第25-26页 |
| 2.5 黑果枸杞、红枸杞总黄酮的测定 | 第26页 |
| 2.6 黑果枸杞、红枸杞多糖的测定 | 第26页 |
| 2.7 黑果枸杞、红枸杞抗坏血酸的测定 | 第26-27页 |
| 2.8 数据分析 | 第27页 |
| 3 结果与讨论 | 第27-30页 |
| 3.1 常规营养成分对比 | 第27页 |
| 3.2 微量元素含量对比 | 第27-28页 |
| 3.3 活性成分含量对比 | 第28-30页 |
| 4 本章小结 | 第30页 |
| 参考文献 | 第30-34页 |
| 第三章 黑果枸杞提取物抗氧化活性研究及成分分析 | 第34-50页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第34页 |
| 2 实验方法 | 第34-37页 |
| 2.1 提取条件的确定 | 第34-35页 |
| 2.1.1 提取溶剂对黑果枸杞提取物花色苷及抗氧化性的影响 | 第34-35页 |
| 2.1.2 乙醇体积分数对黑果枸杞提取物花色苷及抗氧化性的影响 | 第35页 |
| 2.1.3 提取时间对黑果枸杞提取物花色苷及抗氧化性的影响 | 第35页 |
| 2.2 黑果枸杞提取物稳定性研究 | 第35页 |
| 2.2.1 加热对黑果枸杞提取物花色苷及抗氧化性的影响 | 第35页 |
| 2.2.2 光照对黑果枸杞提取物花色苷及抗氧化性的影响 | 第35页 |
| 2.3 黑果枸杞提取物抗氧化活性研究 | 第35-36页 |
| 2.3.1 清除·OH能力 | 第35-36页 |
| 2.3.2 清除DPPH自由基能力 | 第36页 |
| 2.3.3 总抗氧化能力(FRAP法) | 第36页 |
| 2.4 黑果枸杞提取物的HPLC-MS多酚类成分分析 | 第36页 |
| 2.5 数据处理与分析 | 第36-37页 |
| 3 结果与讨论 | 第37-46页 |
| 3.1 提取条件的确定 | 第37-39页 |
| 3.1.1 提取溶剂的确定 | 第37-38页 |
| 3.1.2 乙醇体积分数的确定 | 第38页 |
| 3.1.3 提取时间的确定 | 第38-39页 |
| 3.2 黑果枸杞提取物稳定性研究 | 第39-43页 |
| 3.2.1 加热对提取物稳定性影响 | 第39-41页 |
| 3.2.2 光照对提取物稳定性影响 | 第41-43页 |
| 3.3 黑果枸杞提取物体外抗氧化活性 | 第43-45页 |
| 3.4 黑果枸杞提取物多酚类成分分析 | 第45-46页 |
| 4 本章小结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 第四章 黑果枸杞提取物对HepG2细胞氧化损伤的保护作用 | 第50-62页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第50-51页 |
| 2 实验方法 | 第51-54页 |
| 2.1 细胞培养 | 第51-52页 |
| 2.2 黑果枸杞提取物对细胞存活率的影响 | 第52页 |
| 2.3 H_2O_2体外诱导氧化损伤模型的建立 | 第52-53页 |
| 2.4 黑果枸杞提取物对H_2O_2诱导的HepG2细胞氧化损伤的保护作用 | 第53-54页 |
| 2.4.1 提取物对H_2O_2诱导的HepG2细胞存活率的影响 | 第53页 |
| 2.4.2 提取物对HepG2细胞氧化损伤SOD、MDA、LDH的影响 | 第53页 |
| 2.4.3 提取物对HepG2细胞氧化损伤周期及早期凋亡率的影响 | 第53-54页 |
| 2.5 数据分析 | 第54页 |
| 3 结果与讨论 | 第54-59页 |
| 3.1 黑果枸杞提取物对细胞存活率的影响 | 第54-55页 |
| 3.2 H_2O_2诱导HepG2细胞氧化损伤模型的建立 | 第55-56页 |
| 3.3 黑果枸杞提取物对H_2O_2诱导HepG2细胞氧化损伤的影响 | 第56-59页 |
| 3.3.1 提取物对H_2O_2诱导HepG2细胞存活率的影响 | 第56页 |
| 3.3.2 对HepG2细胞SOD、MDA、LDH的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.3 黑果枸杞提取物对细胞周期及早期凋亡率的影响 | 第57-59页 |
| 4 本章小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
| 第五章 黑果枸杞冲泡液植物化学成分及抗氧化能力研究 | 第62-75页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第62页 |
| 2 实验方法 | 第62-63页 |
| 3 结果与讨论 | 第63-72页 |
| 3.1 温度、时间对冲泡液植物化学物及抗氧化性的影响 | 第63-67页 |
| 3.1.1 冲泡温度、时间对冲泡液色差的影响 | 第63-64页 |
| 3.1.2 冲泡温度、时间对冲泡液的花色苷含量的影响 | 第64-65页 |
| 3.1.3 冲泡温度、时间对冲泡液总酚和总黄酮含量的影响 | 第65页 |
| 3.1.4 冲泡温度、时间对冲泡液多糖含量的影响 | 第65-66页 |
| 3.1.5 冲泡温度、时间对冲泡液抗氧化性的影响 | 第66-67页 |
| 3.2 冲泡温度、次数对冲泡液植物化学物及抗氧化性的影响 | 第67-72页 |
| 3.2.1 冲泡温度、次数对冲泡液色差的影响 | 第67-69页 |
| 3.2.2 冲泡温度、次数对冲泡液的花色苷含量的影响 | 第69页 |
| 3.2.3 冲泡温度、次数对冲泡液的总酚和总黄酮含量的影响 | 第69-71页 |
| 3.2.4 冲泡温度、次数对冲泡液多糖含量的影响 | 第71页 |
| 3.2.5 冲泡温度、次数对冲泡液的抗氧化性的影响 | 第71-72页 |
| 4 本章小结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-75页 |
| 结论与展望 | 第75-77页 |
| 1 结论 | 第75-76页 |
| 2 展望 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文 | 第80-81页 |
