| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词 | 第16-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-28页 |
| 1.1 研究背景及意义 | 第18-19页 |
| 1.1.1 食源性致病菌的危害 | 第18页 |
| 1.1.2 金黄色葡萄球菌简介 | 第18-19页 |
| 1.2 金黄色葡萄球菌的检测方法 | 第19-23页 |
| 1.2.1 传统检测方法 | 第19页 |
| 1.2.2 分子生物学与免疫学方法 | 第19-20页 |
| 1.2.3 电化学免疫传感方法 | 第20-23页 |
| 1.2.3.1 电化学免疫传感原理及分类 | 第20-21页 |
| 1.2.3.2 电化学免疫传感的信号输出方法 | 第21-23页 |
| 1.2.3.3 电化学免疫传感方法在金黄色葡萄球菌检测中的应用 | 第23页 |
| 1.3 纳米材料在电化学免疫传感器中的应用 | 第23-26页 |
| 1.3.1 固定生物分子构建导电性能好的传感平台 | 第24页 |
| 1.3.2 标记生物分子合成信号放大型的纳米探针 | 第24-26页 |
| 1.4 本文研究内容 | 第26-28页 |
| 第二章 基于CdTe量子点功能化碳纳米球电化学免疫传感的金黄色葡萄球菌检测研究 | 第28-42页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验 | 第29-32页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第29页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第29页 |
| 2.2.3 培养基的配制 | 第29-30页 |
| 2.2.4 金黄色葡萄球菌的增菌、涂布和计数 | 第30页 |
| 2.2.5 纳米材料的制备 | 第30-31页 |
| 2.2.5.1 CNS的制备 | 第30-31页 |
| 2.2.5.2 CdTe QDS的制备 | 第31页 |
| 2.2.5.3 CNS@CdTe-Ab纳米探针的制备 | 第31页 |
| 2.2.6 电化学免疫传感器的构建 | 第31-32页 |
| 2.2.7 金黄色葡萄球菌的电化学检测 | 第32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-41页 |
| 2.3.1 CNS@CdTe纳米探针的表征 | 第32-34页 |
| 2.3.1.1 透射电子显微镜表征 | 第32-33页 |
| 2.3.1.2 X射线光电子能谱表征 | 第33-34页 |
| 2.3.1.3 Zeta电势表征 | 第34页 |
| 2.3.2 修饰电极的表征 | 第34-36页 |
| 2.3.2.1 电化学表征 | 第34-35页 |
| 2.3.2.2 原子力显微镜表征 | 第35-36页 |
| 2.3.3 免疫传感器检测条件的优化 | 第36-38页 |
| 2.3.3.1 捕获抗体浓度的优化 | 第36-37页 |
| 2.3.3.2 免疫反应时间的优化 | 第37-38页 |
| 2.3.3.3 检测液pH值的优化 | 第38页 |
| 2.3.4 金黄色葡萄球菌的检测 | 第38-39页 |
| 2.3.5 免疫传感器的重现性、稳定性和特异性 | 第39-40页 |
| 2.3.6 实际样品的检测 | 第40-41页 |
| 2.4 结论 | 第41-42页 |
| 第三章 DNAzyme功能化金/铂纳米探针的合成及其对金黄色葡萄球菌的高灵敏检测 | 第42-56页 |
| 3.1 引言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验 | 第43-46页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第43页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.3 金黄色葡萄球菌的增菌、涂布和计数 | 第44页 |
| 3.2.4 纳米材料的制备 | 第44-45页 |
| 3.2.4.1 AuNPs的制备 | 第44页 |
| 3.2.4.2 GO@AuNPs的制备 | 第44页 |
| 3.2.4.3 Au@Pt纳米复合材料的制备 | 第44页 |
| 3.2.4.4 Strep-Au@Pt-DNAzyme纳米探针的制备 | 第44-45页 |
| 3.2.5 电化学免疫传感器的制备 | 第45-46页 |
| 3.2.6 金黄色葡萄球菌的电化学检测 | 第46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-55页 |
| 3.3.1 GO@AuNPs纳米复合材料的表征 | 第46-47页 |
| 3.3.2 纳米探针的表征 | 第47-49页 |
| 3.3.3 免疫传感器检测条件的优化 | 第49-52页 |
| 3.3.3.1 捕获抗体浓度的优化 | 第49-50页 |
| 3.3.3.2 免疫反应时间的优化 | 第50-51页 |
| 3.3.3.3 亲和反应时间的优化 | 第51页 |
| 3.3.3.4 H_2O_2浓度的优化 | 第51-52页 |
| 3.3.4 不同免疫传感器的催化性能比较 | 第52页 |
| 3.3.5 金黄色葡萄球菌的检测 | 第52-53页 |
| 3.3.6 免疫传感器的重现性、稳定性和特异性 | 第53-54页 |
| 3.3.7 实际样品的检测 | 第54-55页 |
| 3.4 结论 | 第55-56页 |
| 第四章 二茂铁二甲酸(Fc)功能化的聚苯乙烯-丙烯酸球(PSA)模拟酶信号放大策略的构建及其在电化学免疫传感中的应用研究 | 第56-70页 |
| 4.1 引言 | 第56页 |
| 4.2 实验 | 第56-59页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第56-57页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第57页 |
| 4.2.3 金黄色葡萄球菌的增菌、涂布和计数 | 第57-58页 |
| 4.2.4 纳米材料的制备 | 第58页 |
| 4.2.4.1 PSA球的合成 | 第58页 |
| 4.2.4.2 PSA@Fc的制备 | 第58页 |
| 4.2.4.3 纳米探针的制备 | 第58页 |
| 4.2.5 电化学免疫传感器的制备 | 第58-59页 |
| 4.2.6 金黄色葡萄球菌的电化学检测 | 第59页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第59-69页 |
| 4.3.1 PSA@Fc纳米探针的表征 | 第59-61页 |
| 4.3.1.1 透射电子显微镜表征 | 第59-60页 |
| 4.3.1.2 傅里叶红外光谱表征 | 第60-61页 |
| 4.3.2 PSA表面Fc聚合机理的表征 | 第61-62页 |
| 4.3.3 修饰电极的表征 | 第62-63页 |
| 4.3.4 免疫传感器检测条件的优化 | 第63-66页 |
| 4.3.4.1 捕获抗体浓度的优化 | 第63-64页 |
| 4.3.4.2 免疫反应时间的优化 | 第64-65页 |
| 4.3.4.3 H_2O_2浓度的优化 | 第65页 |
| 4.3.4.4 检测液pH的优化 | 第65-66页 |
| 4.3.5 不同纳米探针催化性能的比较 | 第66页 |
| 4.3.6 金黄色葡萄球菌的检测 | 第66-67页 |
| 4.3.7 免疫传感器的重现性、稳定性和特异性 | 第67-68页 |
| 4.3.8 实际样品的检测 | 第68-69页 |
| 4.4 结论 | 第69-70页 |
| 第五章 总结与展望 | 第70-73页 |
| 5.1 研究结论 | 第70-71页 |
| 5.2 创新点 | 第71页 |
| 5.3 展望 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 硕土期间研究成果 | 第81页 |
