| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第9-21页 |
| 1.1 酪氨酸酶概述 | 第9-11页 |
| 1.1.1 酪氨酸酶的生化特征及反应机理 | 第9-11页 |
| 1.1.2 酪氨酸酶的生理功能 | 第11页 |
| 1.2 酪氨酸酶抑制剂研究进展 | 第11-14页 |
| 1.2.1 酪氨酸酶抑制剂分类 | 第11-13页 |
| 1.2.2 几种常见的酪氨酸酶抑制剂 | 第13-14页 |
| 1.3 喹唑啉酮研究现状 | 第14-15页 |
| 1.3.1 喹唑啉酮结构和合成方法 | 第14-15页 |
| 1.3.2 喹唑啉酮的生物活性 | 第15页 |
| 1.4 植物单宁概述 | 第15-18页 |
| 1.4.1 植物单宁分类和结构 | 第15-17页 |
| 1.4.2 植物单宁的结构分析 | 第17页 |
| 1.4.3 植物单宁的活性测定 | 第17页 |
| 1.4.4 植物单宁的应用 | 第17-18页 |
| 1.5 本文的研究内容与意义 | 第18-21页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第18页 |
| 1.5.2 技术路线 | 第18-20页 |
| 1.5.3 研究意义 | 第20-21页 |
| 第二章 材料和方法 | 第21-28页 |
| 2.1 仪器、试剂和材料 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-28页 |
| 2.2.1 单宁的提取、分离与纯化 | 第21-23页 |
| 2.2.2 总酚含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.3 可溶性缩合单宁含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.4 喹唑啉酮化合物的合成 | 第23-24页 |
| 2.2.5 结构分析方法 | 第24-25页 |
| 2.2.5.1 NMR分析 | 第24页 |
| 2.2.5.2 反相HPLC分析 | 第24-25页 |
| 2.2.5.3 ESI-MS分析 | 第25页 |
| 2.2.5.4 FTIR分析 | 第25页 |
| 2.2.6 酶学分析方法 | 第25-27页 |
| 2.2.6.1 二酚酶活力分析 | 第25-26页 |
| 2.2.6.2 二酚酶抑制机理分析 | 第26页 |
| 2.2.6.3 二酚酶抑制类型与抑制常数分析 | 第26-27页 |
| 2.2.7 荧光淬灭分析方法 | 第27页 |
| 2.2.8 分子模拟分析方法 | 第27-28页 |
| 第三章 喹唑啉酮结构与活性分析 | 第28-41页 |
| 3.1 结构分析结果 | 第28-34页 |
| 3.1.1 NMR分析 | 第31-32页 |
| 3.1.2 ESI-MS分析 | 第32-33页 |
| 3.1.3 FTIR分析 | 第33-34页 |
| 3.2 活性分析结果 | 第34-40页 |
| 3.2.1 二酚酶活力抑制分析 | 第34页 |
| 3.2.2 二酚酶抑制机理分析 | 第34-36页 |
| 3.2.3 二酚酶抑制类型与抑制常数分析 | 第36页 |
| 3.2.4 荧光淬灭分析 | 第36-39页 |
| 3.2.4.1 化合物1对蘑菇酪氨酸酶的荧光淬灭分析 | 第36-37页 |
| 3.2.4.2 化合物1对酪氨酸的荧光淬灭分析 | 第37-38页 |
| 3.2.4.3 化合物1对L-DOPA的荧光淬灭分析 | 第38-39页 |
| 3.2.5 分子模拟分析 | 第39-40页 |
| 3.3 讨论与小结 | 第40-41页 |
| 第四章 海棠果单宁结构与活性分析 | 第41-52页 |
| 4.1 结构分析结果 | 第41-47页 |
| 4.1.1 ~13C NMR分析 | 第41-42页 |
| 4.1.2 ESI-MS分析 | 第42-45页 |
| 4.1.3 反相HPLC分析 | 第45-47页 |
| 4.1.3.1 缩合单宁HPLC分析 | 第45-46页 |
| 4.1.3.2 水解单宁HPLC分析 | 第46-47页 |
| 4.2 活性分析结果 | 第47-50页 |
| 4.2.1 二酚酶抑制活力分析 | 第47-48页 |
| 4.2.2 二酚酶抑制机理分析 | 第48-49页 |
| 4.2.3 二酚酶抑制类型与抑制常数分析 | 第49-50页 |
| 4.2.4 酶的荧光淬灭分析 | 第50页 |
| 4.3 讨论与小结 | 第50-52页 |
| 第五章 结论与展望 | 第52-55页 |
| 5.1 结论 | 第52-54页 |
| 5.2 展望 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-57页 |
| 硕士期间论文发表情况 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |