| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-17页 |
| ·黄曲霉毒素B_1 概述 | 第10-11页 |
| ·黄曲霉毒素B_1 的理化性质 | 第10页 |
| ·黄曲霉毒素B_1 的毒性及分布 | 第10页 |
| ·黄曲霉毒素B_1 的限量标准 | 第10-11页 |
| ·食品中AFB_1 的分析方法 | 第11-14页 |
| ·生物鉴定法 | 第11页 |
| ·仪器检测法 | 第11-14页 |
| ·研究意义及研究内容 | 第14-17页 |
| ·研究意义 | 第14页 |
| ·研究内容 | 第14-15页 |
| ·研究的技术路线 | 第15-17页 |
| 第二章 黄曲霉毒素B_1酶联免疫分析方法的建立 | 第17-28页 |
| ·引言 | 第17页 |
| ·材料与方法 | 第17-21页 |
| ·试验材料 | 第17-18页 |
| ·试验方法 | 第18-21页 |
| ·结果与分析 | 第21-27页 |
| ·棋盘滴定 | 第21页 |
| ·包被抗原最佳稀释度确定 | 第21-22页 |
| ·抗体最佳稀释度确定 | 第22页 |
| ·标准品稀释液的优化 | 第22-23页 |
| ·最佳反应时间选择 | 第23-24页 |
| ·抗体稀释液优化 | 第24-25页 |
| ·二抗最佳稀释度确定 | 第25页 |
| ·甲醇浓度对ELISA 的影响 | 第25-26页 |
| ·标准曲线建立 | 第26-27页 |
| ·本章小结 | 第27-28页 |
| 第三章 ELISA 方法测定样品中AFB_1方法评价及试剂盒考核 | 第28-42页 |
| ·引言 | 第28页 |
| ·材料与方法 | 第28-29页 |
| ·主要试剂 | 第28页 |
| ·主要仪器 | 第28-29页 |
| ·试验方法 | 第29-33页 |
| ·花生样品的提取方法 | 第29页 |
| ·酱油的提取方法 | 第29-30页 |
| ·食用油样品的提取方法 | 第30页 |
| ·大米样品的提取方法 | 第30页 |
| ·黄豆样品提取方法 | 第30-31页 |
| ·椰角样品提取方法 | 第31页 |
| ·样品的基质影响评价 | 第31页 |
| ·ELISA 试剂盒的组成 | 第31-32页 |
| ·试剂盒技术参数研究 | 第32-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-40页 |
| ·花生提取方法优化 | 第33-34页 |
| ·酱油提取方法优化 | 第34-36页 |
| ·食用油提取方法优化 | 第36页 |
| ·大米提取方法优化 | 第36-37页 |
| ·黄豆提取方法优化 | 第37页 |
| ·样品的基质影响 | 第37-38页 |
| ·ELISA 试剂盒技术参数考核 | 第38-40页 |
| ·本章小结 | 第40-42页 |
| 第四章 黄曲霉毒素B_1时间分辨荧光免疫分析法的建立 | 第42-53页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·材料与方法 | 第42-43页 |
| ·主要试剂 | 第42页 |
| ·主要仪器 | 第42-43页 |
| ·试验方法 | 第43-45页 |
| ·铕（EU）标抗体制备 | 第43页 |
| ·AFB_1 标准溶液配制 | 第43页 |
| ·最佳包被浓度确定 | 第43页 |
| ·最佳抗体稀释度确定 | 第43页 |
| ·最佳反应时间的确定 | 第43-44页 |
| ·最佳反应温度确定 | 第44页 |
| ·最佳单抗稀释液的确定 | 第44页 |
| ·最佳反应体系的确定 | 第44页 |
| ·TRFIA 试剂盒开发 | 第44-45页 |
| ·试剂盒技术参数 | 第45页 |
| ·结果与分析 | 第45-51页 |
| ·铕标抗体制备 | 第45-46页 |
| ·最佳包被浓度确定 | 第46-47页 |
| ·最佳抗体稀释度确定 | 第47页 |
| ·最佳反应时间确定 | 第47-48页 |
| ·最佳反应温度优化 | 第48页 |
| ·最佳铕标抗体稀释液的确定 | 第48页 |
| ·最佳反应体系确定 | 第48-50页 |
| ·TRFIA 试剂盒开发 | 第50-51页 |
| ·本章小结 | 第51-53页 |
| 第五章 结论与展望 | 第53-55页 |
| ·论文结论 | 第53页 |
| ·创新点 | 第53页 |
| ·展望 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 术语和英文缩略词表 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |