| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第15-41页 |
| 1.1 引言 | 第15-16页 |
| 1.2 别样茶 | 第16-18页 |
| 1.3 植物化学物 | 第18-23页 |
| 1.3.1 酚类物质 | 第18-19页 |
| 1.3.2 类黄酮物质 | 第19-23页 |
| 1.4 植物化学物的保健功能 | 第23-28页 |
| 1.4.1 抗氧化活性 | 第23-24页 |
| 1.4.2 抗肿瘤 | 第24-25页 |
| 1.4.3 抗菌性 | 第25页 |
| 1.4.4 抗过敏 | 第25-26页 |
| 1.4.5 抗炎 | 第26-27页 |
| 1.4.6 抗转移 | 第27页 |
| 1.4.7 化学保护 | 第27页 |
| 1.4.8 抗动脉粥样硬化 | 第27-28页 |
| 1.5 复合作用 | 第28页 |
| 1.6 热加工 | 第28-29页 |
| 1.7 本论文的主要内容 | 第29-30页 |
| 参考文献 | 第30-41页 |
| 第二章 建立酚类植物化学物抗氧化活性和抗增殖活性评价体系 | 第41-66页 |
| 2.1 前言 | 第41-42页 |
| 2.2 材料与方法 | 第42-52页 |
| 2.2.1 试剂 | 第42-43页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第43页 |
| 2.2.3 原料 | 第43-44页 |
| 2.2.4 提取游离态酚类化学物 | 第44页 |
| 2.2.5 提取结合态酚类化学物 | 第44-45页 |
| 2.2.6 酚含量检测 | 第45页 |
| 2.2.7 黄酮含量测定 | 第45-46页 |
| 2.2.8 样品中酚酸HPLC-UV分析 | 第46-47页 |
| 2.2.9 过氧化自由基清除能力（PSC） | 第47-48页 |
| 2.2.10 过氧自由基吸收能力检测（ORAC） | 第48-49页 |
| 2.2.11 细胞培养 | 第49-50页 |
| 2.2.12 细胞抗氧化（CAA） | 第50页 |
| 2.2.13 CAA值量化 | 第50页 |
| 2.2.14 细胞抗增殖实验 | 第50-51页 |
| 2.2.15 细胞毒性实验 | 第51-52页 |
| 2.2.16 数据处理 | 第52页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第52-62页 |
| 2.3.1 苎麻叶中酚的含量 | 第52-53页 |
| 2.3.2 苎麻叶中黄酮的含量 | 第53-54页 |
| 2.3.3 苎麻叶中的酚酸成分 | 第54-57页 |
| 2.3.4 胞外抗氧化活性（PSC、ORAC） | 第57-59页 |
| 2.3.5 苎麻叶的细胞抗氧化活性（CAA） | 第59-61页 |
| 2.3.6 苎麻叶酚类植物化学物的抗增殖活性和细胞毒性 | 第61-62页 |
| 2.4 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-66页 |
| 第三章 四种杨桐叶酚类植物化学物抗氧化、抗增殖特性比较 | 第66-88页 |
| 3.1 引言 | 第66页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第66-69页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第66-67页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第67-68页 |
| 3.2.3 原料 | 第68-69页 |
| 3.3 实验方法 | 第69-71页 |
| 3.3.1 游离酚的提取 | 第69页 |
| 3.3.2 结合态酚提取 | 第69-70页 |
| 3.3.3 酚含量检测 | 第70页 |
| 3.3.4 黄酮含量测定 | 第70页 |
| 3.3.5 杨桐叶槲皮苷、山茶苷A/B、芹菜素HPLC-UV检测 | 第70页 |
| 3.3.6 胞外氧自由基吸收能力测定（ORAC） | 第70-71页 |
| 3.3.7 过氧自由基清除能力检测（PSC） | 第71页 |
| 3.3.8 细胞内抗氧化能力分析（CAA） | 第71页 |
| 3.3.9 细胞抗氧化能力定量分析 | 第71页 |
| 3.3.10 细胞增殖检测 | 第71页 |
| 3.3.11 细胞毒性检测 | 第71页 |
| 3.3.12 数据分析 | 第71页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第71-84页 |
| 3.4.1 酚的含量 | 第71-73页 |
| 3.4.2 黄酮含量 | 第73-74页 |
| 3.4.3 黄酮对多酚的贡献率 | 第74-75页 |
| 3.4.4 HPLC分析 | 第75-77页 |
| 3.4.5 胞外抗氧化作用 | 第77-80页 |
| 3.4.6 胞内抗氧化活性（CAA） | 第80-82页 |
| 3.4.7 对人体肝癌细胞（Hep G2）和乳腺癌细胞（MCF-7）的抗增殖作用 | 第82-84页 |
| 3.5 结论 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-88页 |
| 第四章 亮叶杨桐（石崖茶）炒制前后酚类物质理化、生物活性变化及其对Hep G2细胞抗增殖作用机理的研究 | 第88-111页 |
| 4.1 引言 | 第88-89页 |
| 4.2 材料和方法 | 第89-94页 |
| 4.2.1 试剂 | 第89-90页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第90-91页 |
| 4.2.3 原料 | 第91页 |
| 4.2.4 酚类物质提取 | 第91页 |
| 4.2.5 可溶性固形物检测（TWSS） | 第91-92页 |
| 4.2.6 酚含量测定 | 第92页 |
| 4.2.7 黄酮含量测定 | 第92页 |
| 4.2.8 类黄酮成分液相分析 | 第92页 |
| 4.2.9 固相微萃取GC-MS联用分析 | 第92页 |
| 4.2.10 过氧自由基清除能力检测（PSC） | 第92页 |
| 4.2.11 过氧自由基吸收能力测定（ORAC） | 第92-93页 |
| 4.2.12 细胞培养 | 第93页 |
| 4.2.13 细胞毒性检测 | 第93页 |
| 4.2.14 细胞抗氧化能力检测（CAA） | 第93页 |
| 4.2.15 细胞抗氧化能力质量 | 第93页 |
| 4.2.16 抗增殖检测 | 第93页 |
| 4.2.17 细胞形态变化 | 第93页 |
| 4.2.18 细胞周期检测 | 第93-94页 |
| 4.2.19 细胞凋亡检测 | 第94页 |
| 4.2.20 数据处理 | 第94页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第94-107页 |
| 4.3.1 炒制前后TWSS的变化 | 第94-95页 |
| 4.3.2 炒制前后酚类植物化学物含量的变化 | 第95-99页 |
| 4.3.3 HS-SPME对炒制前后挥发性成分GC/MS分析 | 第99-100页 |
| 4.3.4 炒制前后胞外抗氧化活性的变化 | 第100-102页 |
| 4.3.5 炒制前后细胞抗氧化活性的变化 | 第102-103页 |
| 4.3.6 CAA值定量分析 | 第103-104页 |
| 4.3.7 炒制前后抗增殖作用和细胞毒性的变化 | 第104-105页 |
| 4.3.8 石崖茶酚类植物化学物对Hep G2细胞形态的影响 | 第105页 |
| 4.3.9 石崖茶酚类植物化学物对Hep G2细胞周期和凋亡的影响 | 第105-107页 |
| 4.4 结论 | 第107页 |
| 参考文献 | 第107-111页 |
| 第五章 亮叶杨桐（石崖茶）中类黄酮物质的抗氧化作用和对Hep G2细胞的抗增殖效果 | 第111-125页 |
| 5.1 前言 | 第111-112页 |
| 5.2 材料和方法 | 第112-114页 |
| 5.2.1 试剂 | 第112-113页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第113页 |
| 5.2.3 原料 | 第113-114页 |
| 5.2.4 过氧自由基清除能力（PSC） | 第114页 |
| 5.2.5 过氧自由基吸收能力（ORAC） | 第114页 |
| 5.2.6 细胞培养 | 第114页 |
| 5.2.7 细胞抗氧化能力（CAA） | 第114页 |
| 5.2.8 抗增殖实验 | 第114页 |
| 5.2.9 细胞毒性实验 | 第114页 |
| 5.2.10 数据分析 | 第114页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第114-122页 |
| 5.3.1 胞外抗氧化作用 | 第114-119页 |
| 5.3.2 细胞抗氧化作用 | 第119-121页 |
| 5.3.3 对Hep G2细胞的抗增殖作用和毒性作用 | 第121-122页 |
| 5.4 结论 | 第122页 |
| 参考文献 | 第122-125页 |
| 第六章 体外模拟胃肠道消化对石崖茶（亮叶杨桐）抗氧化活性和生物活性的影响及消化后对Caco-2 抗增殖作用机理研究 | 第125-143页 |
| 6.1 前言 | 第125页 |
| 6.2 材料与方法 | 第125-130页 |
| 6.2.1 试剂 | 第125-127页 |
| 6.2.2 仪器与设备 | 第127页 |
| 6.2.3 原料 | 第127页 |
| 6.2.4 酚类物质提取 | 第127-128页 |
| 6.2.5 细胞培养 | 第128页 |
| 6.2.6 消化模型 | 第128页 |
| 6.2.7 酚含量测定 | 第128页 |
| 6.2.8 总黄酮含量测定 | 第128页 |
| 6.2.9 黄酮醇含量测定 | 第128-129页 |
| 6.2.10 花青素含量测定 | 第129页 |
| 6.2.11 黄酮成分HPLC分析 | 第129页 |
| 6.2.12 超氧自由基清除能力分析（PSC） | 第129页 |
| 6.2.13 超氧自由基吸收能力测定（ORAC） | 第129页 |
| 6.2.14 细胞抗氧化能力 （CAA） | 第129页 |
| 6.2.16 细胞抗氧化定量计算 | 第129页 |
| 6.2.17 细胞毒性分析 | 第129页 |
| 6.2.18 抗增殖作用测定 | 第129页 |
| 6.2.19 细胞周期和凋亡分析 | 第129-130页 |
| 6.2.20 Caspase3/9 活性分析 | 第130页 |
| 6.2.21 数据分析 | 第130页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第130-139页 |
| 6.3.1 消化对酚类植物化学物的影响 | 第130-133页 |
| 6.3.2 消化对抗氧化活性的影响 | 第133-134页 |
| 6.3.3 抗氧化活性与植物化学物质的相关性 | 第134-135页 |
| 6.3.4 消化过程对抗增殖和毒性作用的影响 | 第135-136页 |
| 6.3.5 经胃肠消化后的石崖茶对Caco-2 细胞的作用机理 | 第136-139页 |
| 6.3.6 Caco-2 细胞中Caspase 3/9 酶活性 | 第139页 |
| 6.4 结论 | 第139-140页 |
| 参考文献 | 第140-143页 |
| 结论与展望 | 第143-145页 |
| 结论 | 第143页 |
| 本论文的创新点 | 第143-144页 |
| 展望 | 第144-145页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第145-146页 |
| 致谢 | 第146-147页 |
| 附件 | 第147页 |
