摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
英文缩略语对照 | 第12-13页 |
第一章 绪论 | 第13-25页 |
1.1 番石榴叶的成分与生物活性 | 第13-17页 |
1.1.1 番石榴叶功能成分 | 第13-15页 |
1.1.2 番石榴叶生理活性 | 第15-17页 |
1.2 中草药微生物转化增效作用 | 第17-21页 |
1.2.1 生物转化促进植物酚类及黄酮物质的溶出 | 第18-19页 |
1.2.2 生物转化改变黄酮糖苷的结构 | 第19-21页 |
1.2.3 转化番石榴叶过程微生物代谢产物 | 第21页 |
1.3 植物酚类物质的提取方式 | 第21-23页 |
1.3.1 溶剂浸提法 | 第22页 |
1.3.2 超声波提取法 | 第22页 |
1.3.3 微波提取法 | 第22页 |
1.3.4 超临界流体萃取法 | 第22-23页 |
1.3.5 酶解提取法 | 第23页 |
1.4 本课题研究的意义及内容 | 第23-25页 |
1.4.1 本课题研究的意义 | 第23页 |
1.4.2 本课题研究的主要内容 | 第23-25页 |
第二章 番石榴叶成分的分析与微生物转化培养基的配方 | 第25-38页 |
2.1 实验材料 | 第25-27页 |
2.1.1 菌种 | 第25页 |
2.1.2 培养基 | 第25页 |
2.1.3 主要试剂 | 第25-26页 |
2.1.4 主要仪器 | 第26-27页 |
2.2 实验方法 | 第27-34页 |
2.2.1 番石榴叶成分分析方法 | 第27-31页 |
2.2.2 添加谷物辅料和调节粒度制备番石榴叶固态发酵培养基 | 第31-32页 |
2.2.3 微生物固态发酵生物转化番石榴叶 | 第32页 |
2.2.4 番石榴叶及发酵产物黄酮与酚类物质分析 | 第32-34页 |
2.3 结果与讨论 | 第34-36页 |
2.3.1 番石榴叶主要成分的分析 | 第34-35页 |
2.3.2 添加谷物对红曲发酵番石榴叶的影响 | 第35页 |
2.3.3 粒度对红曲发酵番石榴叶的影响 | 第35-36页 |
2.4 本章小结 | 第36-38页 |
第三章 混菌发酵及发酵条件优化 | 第38-52页 |
3.1 实验材料 | 第38页 |
3.1.1 菌种 | 第38页 |
3.1.2 培养基 | 第38页 |
3.1.3 主要试剂 | 第38页 |
3.1.4 主要仪器 | 第38页 |
3.2 实验方法 | 第38-43页 |
3.2.1 不同菌种进行番石榴叶固态发酵 | 第38-39页 |
3.2.2 混菌不同条件固态发酵番石榴叶 | 第39页 |
3.2.3 响应面优化混菌固态发酵番石榴叶条件 | 第39-40页 |
3.2.4 验证试验 | 第40页 |
3.2.5 分析测定的方法 | 第40-43页 |
3.3 结果与讨论 | 第43-50页 |
3.3.1 不同菌种发酵对番石榴叶生物转化的影响 | 第43-45页 |
3.3.2 混菌不同发酵条件对番石榴叶生物转化功能物质的影响 | 第45-48页 |
3.3.3 响应面优化获得最佳功能成分的含量 | 第48-50页 |
3.4 本章小结 | 第50-52页 |
第四章 微生物固态发酵番石榴叶产品的生物活性评价 | 第52-65页 |
4.1 实验材料 | 第52-53页 |
4.1.1 主要试剂 | 第52-53页 |
4.1.2 主要仪器 | 第53页 |
4.2 实验方法 | 第53-57页 |
4.2.1 产品挥发性成分的测定 | 第53-54页 |
4.2.2 产品不同溶剂提取酚类成分检测 | 第54页 |
4.2.3 产品抗氧化性的测定 | 第54-55页 |
4.2.4 产品抑菌活性的测定 | 第55-56页 |
4.2.5 产品抑制α-葡萄糖苷酶活性的测定 | 第56-57页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第57-64页 |
4.3.1 混菌固态发酵番石榴叶产品挥发性成分的变化 | 第57-59页 |
4.3.2 不同溶剂提取对混菌固态发酵番石榴叶产品酚类成分的影响 | 第59页 |
4.3.3 混菌固态发酵番石榴叶提取物生物活性的评价 | 第59-64页 |
4.4 本章小结 | 第64-65页 |
结论 | 第65-67页 |
参考文献 | 第67-77页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第77-79页 |
致谢 | 第79-81页 |
附件 | 第81页 |