| 摘要 | 第2-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩略语表(Abbreviation) | 第8-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-26页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 果蔬采后贮藏保鲜技术的现状 | 第14-18页 |
| 1.2.1 物理保鲜技术 | 第14-17页 |
| 1.2.2 化学保鲜技术 | 第17-18页 |
| 1.2.3 生物保鲜技术 | 第18页 |
| 1.3 一氧化氮在果蔬抗病反应中的作用 | 第18-21页 |
| 1.3.1 NO和ROS | 第19-20页 |
| 1.3.2 NO和乙烯 | 第20-21页 |
| 1.3.3 NO和生长调节剂 | 第21页 |
| 1.3.4 NO和水杨酸及茉莉酸 | 第21页 |
| 1.4 二氧化氯在果蔬保鲜中的应用 | 第21-24页 |
| 1.4.1 ClO_2的杀菌机理 | 第22页 |
| 1.4.2 ClO_2在食品安全方面的应用 | 第22-24页 |
| 1.4.3 ClO_2保鲜技术研究现状 | 第24页 |
| 1.5 论文的选题依据与研究内容 | 第24-26页 |
| 1.5.1 选题依据 | 第24-25页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 第二章 NO熏蒸对哈密瓜采后品质及病害的影响 | 第26-39页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第27页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.2.2 主要实验试剂 | 第27页 |
| 2.2.3 仪器与设备 | 第27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-32页 |
| 2.3.1 哈密瓜的处理 | 第27页 |
| 2.3.2 损伤接种 | 第27-28页 |
| 2.3.3 测定项目与方法 | 第28-31页 |
| 2.3.4 数据处理 | 第31-32页 |
| 2.4 结果与分析 | 第32-35页 |
| 2.4.1 NO对哈密瓜自然发病率和病情指数的影响 | 第32页 |
| 2.4.2 NO熏蒸对接种后哈密瓜病斑直径和细胞膜透性的影响 | 第32-34页 |
| 2.4.3 NO对接种后哈密瓜品质的影响 | 第34页 |
| 2.4.4 NO对接种后哈密瓜AsA含量、APX和POD活性的影响 | 第34页 |
| 2.4.5 NO对哈密瓜PPO和PAL活性的影响 | 第34-35页 |
| 2.4.6 NO处理对哈密瓜总酚,类黄酮和木质素含量的影响 | 第35页 |
| 2.5 讨论 | 第35-38页 |
| 2.6 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 哈密瓜响应链格孢侵染差异表达基因的分析 | 第39-52页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-40页 |
| 3.3.1 孢子悬浮液的制备 | 第39页 |
| 3.3.2 损伤接种及样品采集 | 第39-40页 |
| 3.3.3 RNA提取和cDNA文库构建 | 第40页 |
| 3.3.4 数据分析和基因功能注释 | 第40页 |
| 3.4 结果与分析 | 第40-51页 |
| 3.4.1 测序评估 | 第40-41页 |
| 3.4.2 差异表达基因分析 | 第41-43页 |
| 3.4.3 差异表达基因聚类分析 | 第43页 |
| 3.4.4 差异表达基因的GO功能注释和富集分析 | 第43-47页 |
| 3.4.5 差异表达基因的Pathway分类及富集分析 | 第47-48页 |
| 3.4.6 植物激素信号转导通路及相关基因 | 第48-51页 |
| 3.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 NO调控水杨酸和茉莉酸信号转导途径对哈密瓜采后抗病性的影响 | 第52-67页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 实验材料与设备 | 第52-53页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第52页 |
| 4.2.2 主要实验试剂 | 第52-53页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第53页 |
| 4.3 实验方法 | 第53-58页 |
| 4.3.1 哈密瓜的处理 | 第53页 |
| 4.3.2 孢子悬浮液的制备 | 第53页 |
| 4.3.3 损伤接种 | 第53-54页 |
| 4.3.4 测定项目与方法 | 第54-58页 |
| 4.3.5 数据处理 | 第58页 |
| 4.4 结果与分析 | 第58-63页 |
| 4.4.1 NO对哈密瓜果实硬度和病斑深度的影响 | 第58页 |
| 4.4.2 NO对哈密瓜果实水杨酸和茉莉酸含量的影响 | 第58-59页 |
| 4.4.3 哈密瓜总RNA的提取 | 第59-60页 |
| 4.4.4 水杨酸和茉莉酸信号转导相关基因片段的扩增 | 第60-61页 |
| 4.4.5 NO对哈密瓜果实SA转导相关基因表达的影响 | 第61-62页 |
| 4.4.6 NO对哈密瓜果实JA信号转导相关基因表达的影响 | 第62-63页 |
| 4.5 讨论 | 第63-66页 |
| 4.5.1 NO对哈密瓜SA信号转导途径的影响 | 第63-65页 |
| 4.5.2 NO对哈密瓜JA信号转导途径的影响 | 第65-66页 |
| 4.6 本章小结 | 第66-67页 |
| 第五章 NO调控乙烯生物合成和信号转导途径对哈密瓜采后抗病性的影响 | 第67-81页 |
| 5.1 引言 | 第67页 |
| 5.2 实验材料与设备 | 第67-68页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第67-68页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第68页 |
| 5.3 实验方法 | 第68-71页 |
| 5.3.1 哈密瓜的处理 | 第68页 |
| 5.3.2 孢子悬浮液的制备 | 第68页 |
| 5.3.3 损伤接种 | 第68页 |
| 5.3.4 测定项目与方法 | 第68-71页 |
| 5.3.5 数据处理 | 第71页 |
| 5.4 结果与分析 | 第71-76页 |
| 5.4.1 NO对哈密瓜ET生物合成的影响 | 第71-72页 |
| 5.4.2 ET生物合成及信号转导相关基因片段的扩增 | 第72-73页 |
| 5.4.3 NO对哈密瓜果实ACSs和ACOs表达的影响 | 第73-74页 |
| 5.4.4 NO对哈密瓜果实CmETR1和CmETR2基因表达的影响 | 第74页 |
| 5.4.5 NO对哈密瓜果实CmCTR1、CmEIN2、CmEIN3和CmEBF1基因表达的影响 | 第74-76页 |
| 5.4.6 NO对哈密瓜果实CmERF1B和CmERF2基因表达的影响 | 第76页 |
| 5.5 讨论 | 第76-80页 |
| 5.5.1 NO对哈密瓜乙烯生物合成途经的影响 | 第76-78页 |
| 5.5.2 NO对哈密瓜乙烯信号转导途经的影响 | 第78-80页 |
| 5.6 本章小结 | 第80-81页 |
| 第六章 NO调控内源激素信号转导途径对哈密瓜采后抗病性的影响 | 第81-99页 |
| 6.1 引言 | 第81页 |
| 6.2 实验材料与设备 | 第81页 |
| 6.3 实验方法 | 第81-84页 |
| 6.3.1 哈密瓜的处理 | 第81页 |
| 6.3.2 哈密瓜果实内源激素的测定 | 第81-82页 |
| 6.3.3 实时荧光定量qPCR分析 | 第82-84页 |
| 6.4 结果与分析 | 第84-95页 |
| 6.4.1 NO对哈密瓜果实内源激素含量变化的影响 | 第84-85页 |
| 6.4.2 内源激素信号转导相关基因片段的扩增 | 第85-86页 |
| 6.4.3 NO对哈密瓜果实IAA信号转导的影响 | 第86-88页 |
| 6.4.4 NO对哈密瓜果实CTK信号转导的影响 | 第88-91页 |
| 6.4.5 NO对哈密瓜果实GA信号转导的影响 | 第91-92页 |
| 6.4.6 NO对哈密瓜果实ABA信号转导的影响 | 第92-95页 |
| 6.5 讨论 | 第95-98页 |
| 6.5.1 NO对哈密瓜IAA信号转导的影响 | 第95-96页 |
| 6.5.2 NO对哈密瓜CTK信号转导的影响 | 第96-97页 |
| 6.5.3 NO对哈密瓜GA信号转导的影响 | 第97页 |
| 6.5.4 NO对哈密瓜ABA信号转导的影响 | 第97-98页 |
| 6.6 本章小结 | 第98-99页 |
| 第七章 ClO_2对哈密瓜采后病害控制作用的影响 | 第99-109页 |
| 7.1 引言 | 第99-100页 |
| 7.2 实验材料与设备 | 第100页 |
| 7.2.1 实验材料 | 第100页 |
| 7.2.2 主要实验试剂 | 第100页 |
| 7.2.3 仪器与设备 | 第100页 |
| 7.3 实验方法 | 第100-101页 |
| 7.3.1 哈密瓜的处理 | 第100页 |
| 7.3.2 损伤接种 | 第100页 |
| 7.3.3 测定项目与方法 | 第100-101页 |
| 7.3.4 数据处理 | 第101页 |
| 7.4 结果与分析 | 第101-106页 |
| 7.4.1 ClO_2处理对哈密瓜自然发病率和病情指数的影响 | 第101-102页 |
| 7.4.2 ClO_2处理对接种后哈密瓜病斑直径和细胞膜透性的影响 | 第102页 |
| 7.4.3 ClO_2处理对接种后哈密瓜品质的影响 | 第102页 |
| 7.4.4 ClO_2处理对接种后哈密瓜AsA含量和APX及POD活性的影响 | 第102-104页 |
| 7.4.5 ClO_2处理对哈密瓜PPO和PAL活性的影响 | 第104-105页 |
| 7.4.6 ClO_2处理对哈密瓜总酚,类黄酮和木质素含量的影响 | 第105-106页 |
| 7.5 讨论 | 第106-108页 |
| 7.6 本章小结 | 第108-109页 |
| 第八章 ClO_2气体采后熏蒸处理对鲜食葡萄采前农药残留降解作用的研究 | 第109-120页 |
| 8.1 引言 | 第109-110页 |
| 8.2 实验材料与设备 | 第110-111页 |
| 8.2.1 实验材料 | 第110页 |
| 8.2.2 主要实验试剂 | 第110页 |
| 8.2.3 仪器与设备 | 第110-111页 |
| 8.3 实验方法 | 第111-113页 |
| 8.3.1 葡萄的采前处理 | 第111页 |
| 8.3.2 ClO_2气体的制备和测定 | 第111-112页 |
| 8.3.3 ClO_2熏蒸处理葡萄 | 第112页 |
| 8.3.4 葡萄采后贮藏品质的测定 | 第112页 |
| 8.3.5 葡萄中残留农药的测定 | 第112-113页 |
| 8.3.6 葡萄中ClO_2残留量的测定 | 第113页 |
| 8.3.7 统计与分析 | 第113页 |
| 8.4 结果与讨论 | 第113-119页 |
| 8.4.1 ClO_2气体的浓度和释放曲线 | 第113-114页 |
| 8.4.2 ClO_2熏蒸处理对葡萄品质的影响 | 第114页 |
| 8.4.3 方法的线性关系,加标回收率和重复性 | 第114-115页 |
| 8.4.4 ClO_2熏蒸对葡萄表面农药的降解作用 | 第115-117页 |
| 8.4.5 农药降解产物的确定 | 第117-118页 |
| 8.4.6 ClO_2在红地球葡萄果实中的残留量 | 第118-119页 |
| 8.5 本章小结 | 第119-120页 |
| 第九章 结论与展望 | 第120-124页 |
| 9.1 结论 | 第120-121页 |
| 9.2 展望 | 第121-124页 |
| 参考文献 | 第124-140页 |
| 附录 | 第140-142页 |
| 在读期间发表的论文 | 第142-143页 |
| 致谢 | 第143-146页 |
