| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1. 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 降血脂肽的概述 | 第10页 |
| 1.2 降低血脂的途径和机理 | 第10-16页 |
| 1.2.1 抑制胆固醇的吸收 | 第10-13页 |
| 1.2.2 抑制胆固醇的合成 | 第13-15页 |
| 1.2.3 降低细胞中胆固醇的含量 | 第15-16页 |
| 1.3 降血脂肽构效关系的研究现状 | 第16-17页 |
| 1.4 国内降血脂肽的研究现状 | 第17-18页 |
| 1.5 蚕蛹蛋白降血脂肽的研究状况 | 第18-19页 |
| 1.6 立题背景及意义 | 第19-20页 |
| 2. 材料与方法 | 第20-30页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第20-22页 |
| 2.2 实验主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-30页 |
| 2.3.1 降血脂肽体外活性检测方法建立的研究 | 第23-24页 |
| 2.3.2 蚕蛹蛋白制备HMG-CoA还原酶抑制肽的酶解条件优化的研究 | 第24-26页 |
| 2.3.3 HMG-CoA还原酶抑制肽的分离纯化及其构效关系的研究 | 第26-30页 |
| 2.3.4 蚕蛹蛋白降血脂肽一级结构鉴定的研究 | 第30页 |
| 3. 结果与分析 | 第30-55页 |
| 3.1 降血脂肽体外活性检测方法的建立 | 第30-34页 |
| 3.1.1 酶促反应与时间的关系 | 第30-31页 |
| 3.1.2 线性范围、回归方程和最低检出限 | 第31-33页 |
| 3.1.3 精密度实验 | 第33页 |
| 3.1.4 回收率实验 | 第33页 |
| 3.1.5 色谱分析 | 第33-34页 |
| 3.2 蚕蛹蛋白制备HMGR抑制肽的酶解条件优化 | 第34-42页 |
| 3.2.1 蛋白酶的选择 | 第34-35页 |
| 3.2.2 单因素实验 | 第35-39页 |
| 3.2.3 响应面优化法的中心点实验结果 | 第39-42页 |
| 3.3 蚕蛹蛋白HMGR抑制肽的分离纯化及其构效关系研究 | 第42-46页 |
| 3.3.1 凝胶柱层析分离结果 | 第42-44页 |
| 3.3.2 采用MOE生成的药效团模型 | 第44-46页 |
| 3.4 蚕蛹蛋白HMGR抑制肽一级结构的鉴定 | 第46-55页 |
| 3.4.1 氨基酸组分的测定结果 | 第46-47页 |
| 3.4.2 降血脂肽分子量的测定结果 | 第47页 |
| 3.4.3 降血脂肽肽段的确定结果 | 第47页 |
| 3.4.4 肽段化学合成的结果 | 第47-51页 |
| 3.4.5 肽段的HMGR抑制活性IC_(50)值 | 第51页 |
| 3.4.6 降脂肽段与受体1HW8的分子对接 | 第51-55页 |
| 4 讨论与结论 | 第55-61页 |
| 4.1 讨论 | 第55-59页 |
| 4.1.1 降血脂肽体外活性检测方法的建立 | 第55-57页 |
| 4.1.2 蚕蛹蛋白制备HMGR抑制肽的酶解条件优化 | 第57-58页 |
| 4.1.3 蚕蛹蛋白HMGR抑制肽的分离纯化及其构效关系 | 第58-59页 |
| 4.1.4 蚕蛹蛋白降血脂肽的一级结构鉴定 | 第59页 |
| 4.2 结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 附录 | 第69-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第75页 |
