目录 | 第1-7页 |
缩写符号说明 | 第7-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
英文摘要 | 第11-13页 |
第一章 绪论 | 第13-30页 |
·目的意义 | 第13-14页 |
·国内外研究进展和主要存在问题 | 第14-24页 |
·甲壳低聚糖制备方法 | 第14-17页 |
·甲壳低聚糖的生物活性 | 第17-21页 |
·甲壳低聚糖的抗肿瘤与抗感染作用 | 第21-23页 |
·甲壳质和壳聚糖的免疫和抗肿瘤活性 | 第23页 |
·主要存在的问题 | 第23-24页 |
·本课题研究目标和内容 | 第24-30页 |
第二章 甲壳低聚糖理化性质研究 | 第30-47页 |
·引言 | 第30页 |
·实验材料和仪器 | 第30-31页 |
·实验方法 | 第31-34页 |
·甲壳低聚糖分子量的测定 | 第31页 |
·甲壳低聚糖脱乙酰度测定 | 第31页 |
·甲壳低聚糖等当点的测定 | 第31-32页 |
·甲壳低聚糖在不同pH水溶液中的溶解性的研究 | 第32页 |
·甲壳低聚糖在不同浓度的乙醇溶液中的溶解度 | 第32页 |
·甲壳低聚糖粘度的测定 | 第32页 |
·甲壳低聚糖稳定性 | 第32-33页 |
·还原糖含量测定方法 | 第33页 |
·甲壳低聚糖吸湿性和保湿性试验 | 第33页 |
·甲壳低聚糖的美拉德褐变试验 | 第33页 |
·甲壳低聚糖抑制淀粉回生 | 第33-34页 |
·结果与讨论 | 第34-44页 |
·甲壳低聚糖分子量及分布 | 第34-35页 |
·甲壳低聚糖脱乙酰度 | 第35-36页 |
·甲壳低聚糖在溶液中的离子性质 | 第36-37页 |
·甲壳低聚糖的溶解性 | 第37-38页 |
·甲壳低聚糖粘度 | 第38-39页 |
·甲壳低聚糖稳定性 | 第39-41页 |
·甲壳低聚糖吸湿性和保湿性试验 | 第41-43页 |
·甲壳低聚糖的美拉德褐变试验 | 第43-44页 |
·甲壳低聚糖抑制淀粉回生 | 第44页 |
·本章结论 | 第44-47页 |
第三章 甲壳低聚糖分级分离和免疫活性筛选研究 | 第47-73页 |
·引言 | 第47页 |
·实验材料和仪器 | 第47-49页 |
·实验方法 | 第49-55页 |
·免疫活性甲壳低聚糖分离与筛选方案 | 第49-50页 |
·UF-201卷式错流超滤方法 | 第50页 |
·RO(NaF)-UF4010超滤纳滤实验膜分离操作方法 | 第50-51页 |
·平板SCM垂直杯式超滤器操作方法 | 第51页 |
·膜通量的测定 | 第51页 |
·免疫活性筛选方法 | 第51-53页 |
·乙醇分级沉淀方法 | 第53页 |
·CM-Sephdax C-25离子交换柱层析 | 第53页 |
·甲壳低聚糖的HPLC分离制备 | 第53页 |
·游离单糖的测定 | 第53-54页 |
·氨基总糖的测定 | 第54-55页 |
·还原糖含量测定 | 第55页 |
·分子量测定 | 第55页 |
·电导率的测定 | 第55页 |
·结果与讨论 | 第55-71页 |
·甲壳低聚糖超滤分级膜组件选择 | 第55-56页 |
·纳滤分级甲壳低聚糖工艺研究 | 第56-61页 |
·氨基总糖的定量及超滤纳滤分级前后各指标分析 | 第61-63页 |
·膜分离组分的免疫活性筛选 | 第63-65页 |
·乙醇分级沉淀甲壳低聚糖及免疫活性筛选 | 第65-67页 |
·甲壳低聚糖离子交换柱层析分离及免疫活性筛选 | 第67-70页 |
·免疫活性组分COS6的HPLC分离制备及活性筛选 | 第70-71页 |
·本章结论 | 第71-73页 |
第四章 免疫活性甲壳低聚糖定量和LC/ESI-MS分析 | 第73-102页 |
·引言 | 第73页 |
·材料和仪器 | 第73-74页 |
·实验方法 | 第74-76页 |
·甲壳低聚糖HPLC分析色谱柱选型和流动相选择实验方法. | 第74页 |
·色谱保留时间的实验测量方法 | 第74-75页 |
·甲壳低聚糖色谱保留时间定性及验证 | 第75页 |
·色谱定量校正因子的实验测量方法 | 第75页 |
·甲壳低聚糖色谱相对校正因子定量及验证 | 第75页 |
·甲壳低聚糖的HPLC分析 | 第75-76页 |
·甲壳低聚糖的LC/ESI-MS分析 | 第76页 |
·免疫活性甲壳低聚糖的定量 | 第76页 |
·结果与讨论 | 第76-99页 |
·HPLC法定量甲壳低聚糖方法的建立 | 第76-86页 |
·HPLC法免疫活性组分的结构确证 | 第86-98页 |
·定量免疫活性组分 | 第98-99页 |
·本章结论 | 第99-102页 |
第五章 甲壳低聚糖免疫活性研究 | 第102-114页 |
·引言 | 第102页 |
·材料与仪器 | 第102-103页 |
·试验方法 | 第103-105页 |
·正常小鼠免疫活性试验分组及给药 | 第103-104页 |
·免疫低下小鼠免疫活性试验分组及给药 | 第104页 |
·脾指数、胸腺指数测定 | 第104页 |
·巨噬细胞吞噬酵母细胞试验方法 | 第104页 |
·小鼠淋巴细胞增殖试验方法 | 第104页 |
·血清溶血素含量HC_(50)测定方法 | 第104页 |
·小鼠脾细胞周期变化 | 第104-105页 |
·统计分析 | 第105页 |
·结果与讨论 | 第105-112页 |
·COS6对正常小鼠免疫活性研究 | 第105-108页 |
·COS6对免疫低下小鼠免疫活性研究 | 第108-112页 |
·本章结论 | 第112-114页 |
第六章 甲壳低聚糖免疫活性机理及构效关系探讨 | 第114-133页 |
·引言 | 第114-115页 |
·材料与仪器 | 第115-117页 |
·试验材料 | 第115-116页 |
·实验仪器 | 第116-117页 |
·实验方法 | 第117-119页 |
·壳五糖和壳六糖体外对小鼠细胞因子和CR3受体的影响研究 | 第117页 |
·壳五糖和壳六糖体内对小鼠细胞因子和CR3受体的影响研究 | 第117页 |
·IL-1、TNF-α、IL-2、IFN-γ含量的测定 | 第117-118页 |
·总RNA的提取方法 | 第118页 |
·总RNA浓度测定 | 第118页 |
·逆转录反应 | 第118-119页 |
·结果与讨论 | 第119-130页 |
·壳五糖和壳六糖体内外对小鼠细胞因子基因转录水平的影响 | 第119-123页 |
·ELISA法检测壳五糖和壳六糖对细胞因子基因表达蛋白质翻译水平的影响 | 第123-126页 |
·壳五糖和壳六糖对细胞表面CR3受体基因表达水平的影响 | 第126-130页 |
·本章结论 | 第130-133页 |
主要结论 | 第133-135页 |
创新点 | 第135-136页 |
攻读博士学位期间发表的文章 | 第136-137页 |
致谢 | 第137页 |