| 摘要 | 第1-14页 |
| Abstract | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-39页 |
| ·纳他霉素简介 | 第16页 |
| ·纳他霉素的结构和理化性质 | 第16-21页 |
| ·纳他霉素的应用及法规 | 第21-23页 |
| ·纳他霉素的研究概况 | 第23-34页 |
| ·原生质体融合技术 | 第34-36页 |
| ·本文研究的目的、意义及主要内容 | 第36-38页 |
| ·本研究的总工艺流程 | 第38-39页 |
| 第二章 纳他霉素检测方法的建立 | 第39-49页 |
| ·材料与方法 | 第40-42页 |
| ·菌种 | 第40页 |
| ·试验药品 | 第40页 |
| ·主要仪器 | 第40页 |
| ·试验方法 | 第40-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-47页 |
| ·测定波长的选择 | 第42页 |
| ·流动相中甲醇与冰醋酸水溶液的比例对保留时间的影响 | 第42-43页 |
| ·流动相中冰醋酸含量对纳他霉素检测的影响 | 第43-44页 |
| ·冰醋酸含量对纳他霉素峰形的影响 | 第44-45页 |
| ·纳他霉素标准品与发酵样品的色谱峰 | 第45页 |
| ·纳他霉素的标准曲线 | 第45-46页 |
| ·精密度和回收率试验 | 第46页 |
| ·实际样品分析 | 第46-47页 |
| ·结论 | 第47页 |
| ·讨论 | 第47-49页 |
| 第三章 纳他霉素产生菌株初筛及诱变研究 | 第49-58页 |
| ·材料与方法 | 第49-51页 |
| ·菌种 | 第49页 |
| ·培养基 | 第49-50页 |
| ·主要仪器 | 第50页 |
| ·试验方法 | 第50-51页 |
| ·结果与分析 | 第51-56页 |
| ·斜面培养基筛选 | 第51-53页 |
| ·琼脂块法初筛出发菌株 | 第53-54页 |
| ·硫酸链霉素最小抑制浓度(MIC)的测定 | 第54页 |
| ·电脉冲强光对SN11菌株诱变剂量的选择 | 第54-55页 |
| ·硫酸二乙酯对SC21菌株诱变剂量的选择 | 第55页 |
| ·突变株筛选 | 第55-56页 |
| ·高产菌株传代稳定性 | 第56页 |
| ·结论 | 第56-57页 |
| ·讨论 | 第57-58页 |
| 第四章 原生质体的制备、再生与原生质体诱变研究 | 第58-74页 |
| ·材料与方法 | 第58-62页 |
| ·菌种 | 第58页 |
| ·试验药品 | 第58-59页 |
| ·培养基 | 第59页 |
| ·相关溶液 | 第59页 |
| ·试验方法 | 第59-62页 |
| ·结果与分析 | 第62-72页 |
| ·SN114和SC216菌株在菌丝培养液中的生长曲线 | 第62页 |
| ·甘氨酸含量对菌丝生长和原生质体制备的影响 | 第62-63页 |
| ·菌龄对原生质体制备和再生的影响 | 第63-64页 |
| ·溶菌酶浓度对原生质体制备和再生的影响 | 第64-65页 |
| ·酶解温度对原生质体制备和再生的影响 | 第65-66页 |
| ·酶解时间对原生质体制备和再生的影响 | 第66-67页 |
| ·正交试验结果 | 第67-69页 |
| ·原生质体的形成和再生 | 第69-70页 |
| ·SN114菌株原生质体紫外诱变及抗性筛选 | 第70-71页 |
| ·SC216菌株原生质体电脉冲强光诱变及抗性筛选 | 第71-72页 |
| ·结论 | 第72-73页 |
| ·讨论 | 第73-74页 |
| 第五章 菌株原生质体融合及融合子的鉴定 | 第74-84页 |
| ·材料与方法 | 第74-78页 |
| ·菌种 | 第74页 |
| ·试验药品 | 第74-75页 |
| ·培养基 | 第75页 |
| ·相关溶液 | 第75页 |
| ·试验方法 | 第75-78页 |
| ·结果与分析 | 第78-83页 |
| ·硫酸链霉素标记 | 第78页 |
| ·恰塔努加链霉菌诱变株SC2164原生质体灭活 | 第78-79页 |
| ·PEG分子量对原生质体融合率的影响 | 第79页 |
| ·PEG6000浓度对原生质体融合率的影响 | 第79-80页 |
| ·融合时间对原生质体融合率的影响 | 第80页 |
| ·融合子筛选 | 第80页 |
| ·融合子鉴定 | 第80-83页 |
| ·结论 | 第83页 |
| ·讨论 | 第83-84页 |
| 第六章 融合子Sr-1的摇瓶发酵条件研究 | 第84-105页 |
| ·材料与方法 | 第84-88页 |
| ·菌种 | 第84页 |
| ·实验药品 | 第84-85页 |
| ·主要仪器 | 第85页 |
| ·培养基 | 第85页 |
| ·试验方法 | 第85-86页 |
| ·试验设计 | 第86-88页 |
| ·结果与分析 | 第88-103页 |
| ·融合子Sr-1最佳接种龄的确定 | 第88-89页 |
| ·融合子Sr-1生长曲线和纳他霉素积累曲线 | 第89页 |
| ·摇瓶发酵培养基组成的优化试验 | 第89-100页 |
| ·纳他霉素摇瓶发酵条件的优化 | 第100-103页 |
| ·结论 | 第103页 |
| ·讨论 | 第103-105页 |
| 第七章 纳他霉素高产菌株5L发酵罐放大培养及纯化研究 | 第105-115页 |
| ·材料与方法 | 第105-108页 |
| ·菌株 | 第105页 |
| ·培养基 | 第105页 |
| ·试验药品 | 第105页 |
| ·主要仪器 | 第105-106页 |
| ·试验方法 | 第106-108页 |
| ·结果与分析 | 第108-114页 |
| ·摇瓶剪切力模拟试验 | 第108页 |
| ·搅拌速度对分批发酵的影响 | 第108-110页 |
| ·最适接种量的确定 | 第110页 |
| ·不同大孔吸附树脂对纳他霉素的吸附解吸性能比较 | 第110-111页 |
| ·HPD200A树脂对纳他霉素的静态吸附与解吸曲线 | 第111页 |
| ·pH对HPD200A树脂吸附和解析的影响 | 第111-112页 |
| ·上柱流速对树脂吸附的影响 | 第112页 |
| ·洗脱流速对树脂解吸效果的影响 | 第112-113页 |
| ·动态解吸曲线 | 第113页 |
| ·样品结晶 | 第113-114页 |
| ·结论 | 第114页 |
| ·讨论 | 第114-115页 |
| 第八章 结论与展望 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-125页 |
| 附录 | 第125-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 攻读博士期间发表学术论文 | 第133页 |
