| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-29页 |
| 1.1 诺如病毒 | 第11-15页 |
| 1.1.1 诺如病毒概况 | 第11-12页 |
| 1.1.2 诺如病毒的检测方法 | 第12-13页 |
| 1.1.3 食品中诺如病毒的富集方法 | 第13-15页 |
| 1.2 副溶血性弧菌 | 第15-21页 |
| 1.2.1 副溶血性弧菌概况 | 第15-16页 |
| 1.2.2 副溶血性弧菌的检测方法 | 第16-18页 |
| 1.2.3 食源性致病菌活菌检测技术 | 第18-21页 |
| 1.3 数字PCR | 第21-26页 |
| 1.3.1 数字PCR简介 | 第21-22页 |
| 1.3.2 数字PCR的发展 | 第22-23页 |
| 1.3.3 数字PCR的应用 | 第23-26页 |
| 1.4 本课题研究的意义和内容 | 第26-29页 |
| 1.4.1 立项依据与意义 | 第26-27页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第27-29页 |
| 第二章 GⅡ型诺如病毒的RT-ddPCR检测方法的研究 | 第29-42页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-33页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第30-31页 |
| 2.2.3 引物和探针 | 第31页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.3 结果与分析 | 第33-41页 |
| 2.3.1 标准曲线的构建 | 第33-34页 |
| 2.3.2 不同退火温度对RT-ddPCR检测GⅡ型诺如病毒结果的影响 | 第34-36页 |
| 2.3.3 RT-ddPCR和RT-qPCR的灵敏度比较 | 第36-37页 |
| 2.3.4 RT-ddPCR和RT-qPCR的重复性比较 | 第37-38页 |
| 2.3.5 不同条件下人工污染样品的GⅡ型诺如病毒回收率的研究 | 第38-40页 |
| 2.3.6 RT-ddPCR和RT-qPCR检测人工污染西生菜中GⅡ型诺如病毒的比较 | 第40-41页 |
| 2.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 副溶血性弧菌活菌的PMA-ddPCR检测方法的研究 | 第42-59页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 材料与方法 | 第42-48页 |
| 3.2.1 菌株 | 第42-43页 |
| 3.2.2 培养基及主要试剂 | 第43页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第43-44页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第44-48页 |
| 3.3 结果与分析 | 第48-58页 |
| 3.3.1 引物的筛选结果 | 第48-50页 |
| 3.3.2 DNA提取方法的比较结果 | 第50-51页 |
| 3.3.3 PMA处理优化结果 | 第51-53页 |
| 3.3.4 PMA-ddPCR、PMA-qPCR和qPCR的线性关系 | 第53-54页 |
| 3.3.5 PMA-ddPCR、PMA-qPCR和qPCR检测不同活菌比例的菌液结果 | 第54-55页 |
| 3.3.6 PMA-ddPCR和PMA-qPCR的灵敏度 | 第55-56页 |
| 3.3.7 PMA-ddPCR和PMA-qPCR测定人工污染样品中副溶血性弧菌活菌 | 第56-58页 |
| 3.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 结论与展望 | 第59-62页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 本文创新点 | 第60页 |
| 展望 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-75页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 附件 | 第78页 |
