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海洋乳酸菌抗氧化活性研究

摘要第4-6页
abstract第6-7页
第一章 前言第11-21页
    1.1 乳酸菌概述第11-13页
        1.1.1 乳酸菌的分类分布第11页
        1.1.2 乳酸菌的生理功能第11-12页
        1.1.3 乳酸菌在食品工业中的应用第12-13页
    1.2 自由基与生物体内抗氧化防御系统第13-16页
        1.2.1 自由基定义第13页
        1.2.2 自由基危害第13-15页
        1.2.3 生物体内抗氧化防御系统第15-16页
    1.3 乳酸菌抗氧化活性第16-19页
        1.3.1 乳酸菌抗氧化活性的研究第16-19页
        1.3.2 乳酸菌抗氧化活性的可能机制第19页
    1.4 研究目的及意义第19-20页
    1.5 研究内容第20-21页
第二章 海洋抗氧化活性乳酸菌的筛选第21-30页
    2.1 材料和仪器第21-23页
        2.1.1 材料第21页
        2.1.2 试剂及药品第21-22页
        2.1.3 试剂配置第22页
        2.1.4 仪器与设备第22-23页
    2.2 实验方法第23-24页
        2.2.1 海洋乳酸菌初步筛选第23页
        2.2.2 乳酸菌完整细胞制备第23页
        2.2.3 DPPH自由基清除能力测定第23-24页
        2.2.4 菌种鉴定第24页
        2.2.5 统计分析第24页
    2.3 结果与讨论第24-29页
        2.3.1 海洋乳酸菌的筛选第24页
        2.3.2 抗氧化活性乳酸菌筛选第24-28页
        2.3.3 菌种鉴定结果第28-29页
    2.4 本章小结第29-30页
第三章 海洋乳酸菌抗氧化活性测定第30-42页
    3.1 材料和仪器第30-32页
        3.1.1 材料第30页
        3.1.2 试剂及药品第30-31页
        3.1.3 溶液配制第31-32页
        3.1.4 仪器与设备第32页
    3.2 实验方法第32-34页
        3.2.1 乳酸菌完整细胞及无细胞提取物制备第32页
        3.2.2 乳酸菌H2O2耐受能力测定第32页
        3.2.3 乳酸菌羟自由基(·OH)清除能力测定第32-33页
        3.2.4 乳酸菌超氧阴离子(O_2~-)清除能力测定第33页
        3.2.5 乳酸菌总还原能力测定测定第33-34页
        3.2.6 乳酸菌DPPH自由基清除能力测定第34页
        3.2.7 乳酸菌超氧化歧化酶(SOD)活力测定第34页
        3.2.8 乳酸菌谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活力测定第34页
        3.2.9 统计分析第34页
    3.3 结果与讨论第34-40页
        3.3.1 乳酸菌H2O2耐受能力第34-35页
        3.3.2 乳酸菌羟自由基(·OH)清除能力第35-36页
        3.3.3 乳酸菌超氧阴离子(O_2~-)清除能力第36-37页
        3.3.4 乳酸菌总还原能力第37页
        3.3.5 乳酸菌DPPH自由基清除能力第37-39页
        3.3.6 乳酸菌SOD活性与GSH-Px活性第39-40页
    3.4 本章小结第40-42页
第四章 海洋乳酸菌对氧化损伤HT-29 细胞的保护作用第42-54页
    4.1 材料和仪器第42-43页
        4.1.1 材料第42页
        4.1.2 试剂及药品第42-43页
        4.1.3 溶液配制第43页
        4.1.4 仪器与设备第43页
    4.2 实验方法第43-46页
        4.2.1 L.casei Y3与L.plantarum Y44完整细胞制备第43页
        4.2.2 细胞培养第43-44页
        4.2.3 MTS法检测细胞存活率第44页
        4.2.4 最优HT-29 细胞浓度的选择第44页
        4.2.5 H2O2对HT-29 细胞氧化损伤模型的建立第44-45页
        4.2.6 细胞分组第45页
        4.2.7 L.casei Y3与L.plantarum Y44对氧化损伤HT-29 细胞存活率影响第45页
        4.2.8 L.casei Y3与L.plantarum Y44对氧化损伤HT-29 细胞SOD、GSH-Px及MDA的影响第45页
        4.2.9 L.casei Y3与L.plantarum Y44对E.coli刺激细胞产生IL-8 的影响第45-46页
        4.2.10 统计分析第46页
    4.3 结果与讨论第46-53页
        4.3.1 最优HT-29 细胞浓度的选择第46-47页
        4.3.2 H2O2对HT-29 细胞氧化损伤模型的建立第47-48页
        4.3.3 L.casei Y3与L.plantarum Y44对H_2O_2氧化损伤HT-29 细胞存活率影第48-49页
        4.3.4 L.casei Y3与L.plantarum Y44对细胞SOD、GSH-Px及MDA的影响第49-51页
        4.3.5 L.casei Y3与L.plantarum Y44对E.coli刺激HT-29 细胞产生IL-8 的影响作用第51-53页
    4.4 本章小结第53-54页
第五章 结论与展望第54-55页
    5.1 结论第54页
    5.2 展望第54-55页
参考文献第55-62页
致谢第62-63页
附录第63页

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