摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
缩略语表 | 第7-11页 |
第1章 前言 | 第11-19页 |
1.1 经典酶联免疫分析技术的概述 | 第11-15页 |
1.1.1 光度酶联免疫分析法 | 第11-12页 |
1.1.2 化学发光酶联免疫分析法 | 第12-13页 |
1.1.3 荧光酶联免疫分析法 | 第13-14页 |
1.1.4 电化学酶联免疫分析法 | 第14-15页 |
1.2 单核增生李斯特菌和大肠杆菌O157:H7的酶联免疫分析研究进展 | 第15-18页 |
1.2.1 单核增生李斯特菌的理化性质、致病机理、感染对象和分布 | 第15页 |
1.2.2 L. monocytogenes的酶联免疫分析研究进展 | 第15-16页 |
1.2.3 大肠杆菌O157:H7的理化性质、致病机理、感染对象和分布 | 第16-17页 |
1.2.4 E. coli O157:H7的酶联免疫分析研究进展 | 第17-18页 |
1.3 结语 | 第18-19页 |
第2章 基于pELISA检测生菜中的L. monocytogenes | 第19-36页 |
2.1 引言 | 第19-21页 |
2.2 材料与仪器 | 第21-22页 |
2.2.1 主要试剂及材料 | 第21页 |
2.2.2 主要仪器设备 | 第21页 |
2.2.3 主要试剂的配制与制备 | 第21-22页 |
2.3 实验方法 | 第22-24页 |
2.3.1 致病菌及其培养条件 | 第22页 |
2.3.2 合成PAA修饰的SiO_2纳米颗粒(SiO_2@PAA) | 第22-23页 |
2.3.3 偶联CAT和SiO_2@PAA(SiO_2@PAA@CAT) | 第23页 |
2.3.4 合成生物素化SiO_2@PAA@CAT(SiO_2@PAA@CAT@Biotin) | 第23页 |
2.3.5 建立双抗夹心 p ELISA 检测 L. monocytogenes | 第23-24页 |
2.3.6 检测生菜样本中的L. monocytogenes | 第24页 |
2.4 结果与讨论 | 第24-35页 |
2.4.1 SiO_2、SiO_2@PAA、SiO_2@PAA@CAT和SiO_2@PAA@CAT@Biotin的表征 | 第24-26页 |
2.4.2 实验参数的优化 | 第26-29页 |
2.4.3 最低检测灵敏度的测定 | 第29-32页 |
2.4.4 验证pELSIA的特异性 | 第32-33页 |
2.4.5 pELSIA的实际应用 | 第33-35页 |
2.5 小结 | 第35-36页 |
第3章 CAT介导的荧光淬灭ELISA高灵敏检测牛奶中的E.coli O157:H7 | 第36-51页 |
3.1 引言 | 第36-38页 |
3.2 材料与仪器 | 第38页 |
3.2.1 主要试剂及材料 | 第38页 |
3.2.2 主要仪器设备 | 第38页 |
3.2.3 主要试剂的配制与制备 | 第38页 |
3.3 实验方法 | 第38-40页 |
3.3.1 细菌来源及培养条件 | 第38-39页 |
3.3.2 合成生物素化mAb(Biotin@mAb) | 第39页 |
3.3.3 合成SA化的CAT(SA@CAT) | 第39-40页 |
3.3.4 建立荧光ELISA检测E. coli O157:H7 | 第40页 |
3.3.5 检测牛奶中的E. coli O157:H7 | 第40页 |
3.4 结果与讨论 | 第40-50页 |
3.4.1 H_2O_2介导的MPA-QDs荧光淬灭 | 第40-42页 |
3.4.2 实验参数的优化 | 第42-45页 |
3.4.3 荧光ELISA检测性能的评价 | 第45-49页 |
3.4.4 荧光ELISA的实际应用 | 第49-50页 |
3.5 小结 | 第50-51页 |
第4章 结论与展望 | 第51-53页 |
4.1 结论 | 第51页 |
4.1.1 基于pELISA检测生菜中L. monocytogenes | 第51页 |
4.1.2 基于荧光淬灭ELISA检测牛奶中的E. coli O157:H7 | 第51页 |
4.2 展望 | 第51-53页 |
致谢 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-62页 |
附录1 试剂材料 | 第62-63页 |
附录2 仪器设备 | 第63-64页 |
个人介绍 | 第64-65页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第65-66页 |
获奖情况 | 第66-67页 |
附件 | 第67-72页 |