摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 引言 | 第10-21页 |
1.1 草鱼概论 | 第10-13页 |
1.1.1 草鱼起源 | 第10页 |
1.1.2 草鱼形态特征、习性和主要经济价值 | 第10-12页 |
1.1.3 草鱼来源地——长江瑞昌段天然鱼苗场 | 第12-13页 |
1.2 鱼类鳞片概论 | 第13-15页 |
1.2.1 鱼鳞组成成分 | 第13页 |
1.2.2 鱼鳞结构 | 第13-14页 |
1.2.3 鱼鳞的作用 | 第14-15页 |
1.3 DNA条形码技术 | 第15-16页 |
1.3.1 基于COI基因的DNA条形码技术起源 | 第15页 |
1.3.2 基于COI基因的DNA条形码技术在物种分类方面研究 | 第15-16页 |
1.4 微卫星分子标记技术 | 第16-18页 |
1.4.1 微卫星起源及作用 | 第16-17页 |
1.4.2 微卫星分子标记技术在个体识别方面发展及研究 | 第17-18页 |
1.5 研究目的、内容及意义 | 第18-21页 |
1.5.1 研究目的和内容 | 第18-19页 |
1.5.2 研究意义 | 第19-21页 |
第二章 草鱼总DNA提取方法的优化 | 第21-30页 |
2.1 引言 | 第21-22页 |
2.2 材料试剂 | 第22-23页 |
2.2.1 实验材料 | 第22页 |
2.2.2 实验试剂 | 第22-23页 |
2.2.3 实验仪器和设备 | 第23页 |
2.3 实验方法 | 第23-25页 |
2.3.1 草鱼鱼鳞的选择和消化 | 第23页 |
2.3.2 草鱼总DNA提取 | 第23-24页 |
2.3.3 草鱼总DNA琼脂糖电泳检测 | 第24页 |
2.3.4 提取总DNA效果检测与比较 | 第24-25页 |
2.4 结果分析 | 第25-28页 |
2.4.1 改良Tris饱和酚-氯仿与传统酚-氯仿法提取草鱼总DNA比较 | 第25-27页 |
2.4.2 改良Tris饱和酚-氯仿法提取草鱼总DNA优势的验证 | 第27-28页 |
2.5 结果与讨论 | 第28-30页 |
第三章 基于线粒体COI的DNA条形码技术在草鱼个体识别中可行性研究 | 第30-39页 |
3.1 引言 | 第30页 |
3.2 材料试剂 | 第30-31页 |
3.2.1 实验材料 | 第30页 |
3.2.2 实验试剂 | 第30-31页 |
3.2.3 实验仪器和设备 | 第31页 |
3.3 实验方法 | 第31-33页 |
3.3.1 草鱼总DNA提取 | 第31页 |
3.3.2 线粒体COI基因的PCR扩增、纯化和测序 | 第31-32页 |
3.3.3 PCR产物回收和纯化 | 第32页 |
3.3.4 目的片段的TA克隆及COI基因的测序 | 第32-33页 |
3.3.5 COI基因序列分析 | 第33页 |
3.4 结果分析 | 第33-38页 |
3.4.1 草鱼线粒体COI基因PCR扩增结果 | 第33页 |
3.4.2 草鱼COI基因TA克隆,特异性引物PCR检测结果 | 第33-35页 |
3.4.3 草鱼COI基因序列比较分析 | 第35-36页 |
3.4.4 草鱼COI氨基酸序列比较分析 | 第36-37页 |
3.4.5 草鱼COI基因序列碱基组成和密码子不同位点碱基含量分析 | 第37页 |
3.4.6 草鱼遗传距离的分析 | 第37-38页 |
3.5 结果与讨论 | 第38-39页 |
第四章 微卫星分子标记技术在草鱼个体识别中可行性研究 | 第39-51页 |
4.1 引言 | 第39-40页 |
4.2 材料试剂 | 第40-41页 |
4.2.1 实验材料 | 第40页 |
4.2.2 实验试剂 | 第40-41页 |
4.2.3 实验仪器和设备 | 第41页 |
4.3 实验方法 | 第41-43页 |
4.3.1 小范围草鱼个体识别 | 第41-42页 |
4.3.2 大范围草鱼个体识别实验性研究 | 第42-43页 |
4.4 结果分析 | 第43-48页 |
4.4.1 草鱼SSR引物的筛选 | 第43-44页 |
4.4.2 草鱼SSR片段扩增效果 | 第44-45页 |
4.4.3 草鱼个体识别性研究分析 | 第45-48页 |
4.5 结果讨论 | 第48-50页 |
第五章 结论与展望 | 第50-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-58页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第58页 |