| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-30页 |
| 1 真菌多糖概述 | 第15-25页 |
| ·真菌多糖的种类与来源 | 第15页 |
| ·真菌多糖的生物活性 | 第15-19页 |
| ·调节免疫功能 | 第15-17页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第17-18页 |
| ·抗病毒活性 | 第18页 |
| ·降血糖作用 | 第18页 |
| ·抗衰老 | 第18-19页 |
| ·促进核酸与蛋白质的生物合成 | 第19页 |
| ·真菌多糖的化学结构与生物活性的关系 | 第19-22页 |
| ·真菌多糖的分子构型对生物活性的影响 | 第19-20页 |
| ·分子量对生物活性的影响 | 第20页 |
| ·主链对生物活性的影响 | 第20-21页 |
| ·支链及支链基团对生物活性的影响 | 第21-22页 |
| ·多糖的提取分离与纯化 | 第22-24页 |
| ·多糖的提取 | 第22页 |
| ·纯化及纯度评价 | 第22-24页 |
| ·多糖的纯化 | 第22页 |
| ·多糖的纯度评价 | 第22-24页 |
| ·多糖其它方面的应用 | 第24页 |
| ·多糖的结构修饰 | 第24-25页 |
| 2 茯砖茶的研究进展 | 第25-28页 |
| ·茯砖茶优势菌的研究 | 第25-28页 |
| ·冠突散囊菌的形态结构 | 第25-26页 |
| ·生长条件 | 第26页 |
| ·茯砖发花过程中各种成份变化 | 第26-27页 |
| ·产毒性研究 | 第27-28页 |
| ·茯砖茶在营养医疗保健方面的研究 | 第28页 |
| 3 课题的目的与意义 | 第28-29页 |
| 4 主要研究内容 | 第29页 |
| 5 主要创新点 | 第29-30页 |
| 第二章 冠突散囊菌胞外多糖提取工艺的研究 | 第30-39页 |
| 1 材料与方法 | 第30-33页 |
| ·试验材料 | 第30页 |
| ·主要仪器和设备 | 第30-31页 |
| ·试验方法 | 第31-33页 |
| ·提取工艺与操作要点 | 第31页 |
| ·提取工艺 | 第31页 |
| ·操作要点 | 第31页 |
| ·冠突散囊菌胞外多糖提取工艺研究 | 第31-32页 |
| ·检测项目与方法 | 第32-33页 |
| ·粗多糖提取量的测定 | 第32页 |
| ·总糖含量的测定:苯酚—硫酸法 | 第32-33页 |
| ·稳定性试验 | 第33页 |
| ·精密度试验 | 第33页 |
| ·回收率试验 | 第33页 |
| ·蛋白质的测定方法:凯氏定氮法 | 第33页 |
| ·数理分析方法 | 第33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-37页 |
| ·胞外多糖最佳提取工艺 | 第34-35页 |
| ·冠突散囊菌液体发酵液浓缩比例与多糖提取量的关系 | 第35页 |
| ·醇沉时间与冠突散囊菌液体发酵液多糖提取量的关系 | 第35-36页 |
| ·乙醇浓度与冠突散囊菌液体发酵液多糖提取量的关系 | 第36页 |
| ·粗多糖中总糖含量和蛋白质含量测定结果 | 第36-37页 |
| ·多糖测定方法的评价,以粗多糖ECP为例 | 第37页 |
| ·多糖测定方法的稳定性结果 | 第37页 |
| ·多糖测定方法的精密度试验结果 | 第37页 |
| ·多糖测定方法的加样回收率试验结果 | 第37页 |
| 3 讨论与小结 | 第37-39页 |
| 第三章 冠突散囊菌胞外多糖的分离纯化 | 第39-46页 |
| 1 材料与方法 | 第40-42页 |
| ·试验材料 | 第40页 |
| ·试验仪器 | 第40-41页 |
| ·试验方法 | 第41-42页 |
| ·多糖理化性质的初步检测 | 第41页 |
| ·H_2O_2除色素 | 第41页 |
| ·Sevag法除蛋白 | 第41页 |
| ·冠突散囊菌胞外多糖的分离和纯化 | 第41-42页 |
| ·粗多糖的预处理 | 第41页 |
| ·粗多糖的DEAE-52柱层析 | 第41-42页 |
| ·粗多糖的凝胶层析 | 第42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-45页 |
| ·粗多糖的理化性质 | 第42-43页 |
| ·粗多糖的DEAE-52柱层析分离结果 | 第43-45页 |
| 3 讨论与小结 | 第45-46页 |
| 第四章 冠突散囊菌胞外多糖的性质研究 | 第46-71页 |
| 1 材料与方法 | 第47-51页 |
| ·试验材料 | 第47页 |
| ·试验仪器 | 第47页 |
| ·试验方法 | 第47-51页 |
| ·ECP-A和ECP-A~#的纯度鉴定及分子量测定 | 第47-48页 |
| ·凝胶柱层析法检验纯度 | 第47页 |
| ·凝胶柱层析法分子量测定 | 第47-48页 |
| ·多糖的光谱分析 | 第48页 |
| ·紫外光谱分析 | 第48页 |
| ·红外光谱分析 | 第48页 |
| ·多糖的组成单糖分析 | 第48-49页 |
| ·完全酸水解 | 第48页 |
| ·完全水解产物中中性糖组成及比例的测定(气相色谱分析) | 第48-49页 |
| ·多糖的结构分析 | 第49-51页 |
| ·α-淀粉酶作用 | 第49页 |
| ·高碘酸氧化和Smith降解 | 第49-51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-69页 |
| ·ECP-A和ECP-A~#的紫外光谱分析 | 第51页 |
| ·ECP-A和ECP-A~#在Sephadex G-100色谱柱上的分离纯化 | 第51-52页 |
| ·ECP-A1,ECP-A2,ECP-A~#1和ECP-A~#2的纯度鉴定 | 第52-54页 |
| ·ECP-A1,ECP-A2,ECP-A~#1和ECP-A~#2的相对分子量的测定结果 | 第54-55页 |
| ·ECP-A1,ECP-A2,ECP-A~#1和ECP-A~#2的紫外吸收光谱 | 第55-56页 |
| ·ECP-A1,ECP-A2,ECP-A~#1和ECP-A~#2的红外吸收光谱 | 第56-60页 |
| ·ECP-A1,ECP-A2,ECP-A~#1和ECP-A~#2的单糖组成分析 | 第60-63页 |
| ·ECP-A1的薄层层析结果 | 第60页 |
| ·ECP-A1,ECP-A2,ECP-A~#1和ECP-A~#2的单糖组成分析 | 第60-63页 |
| ·ECP-A1,ECP-A2,ECP-A~#1和ECP-A~#2的结构分析 | 第63-69页 |
| ·α-淀粉酶作用结果 | 第63-64页 |
| ·高碘酸氧化 | 第64-66页 |
| ·Smith降解 | 第66-69页 |
| 3 讨论与小结 | 第69-71页 |
| 第五章 全文结论 | 第71-73页 |
| 1 冠突散囊菌胞外多糖提取工艺优化与含量测定方法 | 第71页 |
| 2 冠突散囊菌胞外多糖的分离纯化 | 第71页 |
| 3 冠突散囊菌胞外多糖的结构分析 | 第71-73页 |
| 论文创新点 | 第73-74页 |
| 展望 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 作者简介 | 第80页 |
