| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 第1章 绪论 | 第10-24页 |
| 1.1 课题背景及研究目的和意义 | 第10-11页 |
| 1.1.1 研究背景 | 第10页 |
| 1.1.2 研究目的及意义 | 第10-11页 |
| 1.2 水稻种质资源遗传多样性研究 | 第11-13页 |
| 1.2.1 水稻遗传多样性研究意义 | 第11-12页 |
| 1.2.2 我国水稻遗传多样性研究 | 第12-13页 |
| 1.3 水稻遗传多样性的研究方法 | 第13-15页 |
| 1.3.1 形态标记 | 第14页 |
| 1.3.2 染色体标记（细胞学标记） | 第14页 |
| 1.3.3 生化标记 | 第14-15页 |
| 1.3.4 分子标记 | 第15页 |
| 1.4 分子标记技术 | 第15-19页 |
| 1.4.1 RFLP | 第15-16页 |
| 1.4.2 RAPD | 第16-17页 |
| 1.4.3 AFLP | 第17页 |
| 1.4.4 SNP | 第17-18页 |
| 1.4.5 SSR | 第18-19页 |
| 1.5 SSR标记在水稻种质资源遗传多样性研究中的应用 | 第19-20页 |
| 1.6 DNA指纹图谱技术应用概述 | 第20-22页 |
| 1.6.1 DNA指纹图谱技术 | 第20-21页 |
| 1.6.2 稻米DNA指纹图谱技术应用进展 | 第21-22页 |
| 1.7 主要研究内容及技术路线 | 第22-24页 |
| 1.7.1 主要研究内容 | 第22-23页 |
| 1.7.2 本实验技术路线 | 第23-24页 |
| 第2章 实验材料、试剂及方法 | 第24-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-31页 |
| 2.1.1 水稻样品及来源 | 第24-25页 |
| 2.1.2 实验试剂及仪器设备 | 第25-27页 |
| 2.1.3 SSR引物 | 第27页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第27-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-35页 |
| 2.2.1 大米基因组DNA提取 | 第31-32页 |
| 2.2.2 DNA浓度检测 | 第32页 |
| 2.2.3 SSR-PCR扩增 | 第32-33页 |
| 2.2.4 6%变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第33页 |
| 2.2.5 银染显色 | 第33-34页 |
| 2.2.6 数据统计及分析方法 | 第34-35页 |
| 第3章 实验结果及分析 | 第35-71页 |
| 3.1 DNA提取条件优化 | 第35-42页 |
| 3.1.1 改进CTAB法DNA提取效果 | 第35-37页 |
| 3.1.2 水浴时间对粳稻基因组DNA提取效果的影响 | 第37-38页 |
| 3.1.3 异丙醇醇沉时间对粳稻基因组DNA提取效果的影响 | 第38-40页 |
| 3.1.4 利用优化改良CTAB法提取样品基因组DNA | 第40-42页 |
| 3.2 SSR-PCR体系优化 | 第42-45页 |
| 3.2.1 SSR-PCR体系 | 第42-43页 |
| 3.2.2 PCR循环数 | 第43-44页 |
| 3.2.3 DNA模板量 | 第44页 |
| 3.2.4 引物浓度 | 第44-45页 |
| 3.3 6%变性聚丙烯酰胺凝胶电泳优化 | 第45-46页 |
| 3.4 银染显色体系优化 | 第46-48页 |
| 3.4.1 固定液 | 第46-47页 |
| 3.4.2 染色液 | 第47-48页 |
| 3.4.3 显色液 | 第48页 |
| 3.5 SSR引物的筛选 | 第48-51页 |
| 3.5.1 琼脂糖凝胶电泳筛选SSR引物 | 第49-50页 |
| 3.5.2 核心SSR引物筛选 | 第50-51页 |
| 3.6 61份粳米DNA指纹图谱构建 | 第51-62页 |
| 3.7 依据SSR分子标记的遗传多样性分析 | 第62-68页 |
| 3.8 依据SSR分子标记的聚类分析 | 第68-69页 |
| 3.9 关于黑龙江省粳稻品种遗传多样性 | 第69-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-80页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其他成果 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
