| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 1 前言 | 第9-21页 |
| 1.1 海产品的腐败 | 第9-13页 |
| 1.1.1 鱼类死后变化 | 第9-10页 |
| 1.1.2 鱼类腐败的机制 | 第10-12页 |
| 1.1.3 海产品中腐败微生物 | 第12-13页 |
| 1.1.4 海产品中特定腐败菌的研究 | 第13页 |
| 1.2 海产品防腐措施 | 第13-15页 |
| 1.2.1 低温防腐 | 第13-14页 |
| 1.2.2 控制水活度 | 第14页 |
| 1.2.3 控制自溶酶的腐败 | 第14页 |
| 1.2.4 控制氧化腐败 | 第14页 |
| 1.2.5 控制微生物的腐败 | 第14-15页 |
| 1.3 生物防腐剂 | 第15-19页 |
| 1.3.1 ε-聚赖氨酸 | 第15-16页 |
| 1.3.2 乳酸链球菌素 | 第16-17页 |
| 1.3.3 溶菌酶 | 第17-19页 |
| 1.3.4 复合生物防腐剂 | 第19页 |
| 1.4 研究背景 | 第19-21页 |
| 1.4.1 论文研究背景 | 第19-20页 |
| 1.4.2 论文研究内容 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 主要培养基 | 第21页 |
| 2.1.2 实验药品 | 第21-22页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-28页 |
| 2.2.1 腐败菌筛选 | 第22-23页 |
| 2.2.2 腐败菌的分离纯化 | 第23页 |
| 2.2.3 腐败菌的细胞形态学观察及生理生化实验 | 第23页 |
| 2.2.4 细菌16S rDNA鉴定 | 第23-24页 |
| 2.2.5 菌悬液以及生物防腐剂溶液的制备 | 第24页 |
| 2.2.6 生物防腐剂对腐败菌的抑菌活性测定 | 第24页 |
| 2.2.7 最小抑菌浓度(MIC值)测定抑菌实验 | 第24-25页 |
| 2.2.8 响应面实验 | 第25页 |
| 2.2.9 扫描电子显微镜实验(SEM) | 第25页 |
| 2.2.10 复配剂应用实验 | 第25页 |
| 2.2.11 菌落总数测定 | 第25-26页 |
| 2.2.12 感官评价 | 第26页 |
| 2.2.13 样品pH值测定 | 第26页 |
| 2.2.14 挥发性盐基氮(TVB-N)的测定 | 第26页 |
| 2.2.15 数据处理与统计分析 | 第26-27页 |
| 2.2.16 鱼肉样品准备及细菌总DNA的提取 | 第27页 |
| 2.2.17 生物信息学数据分析 | 第27-28页 |
| 3 结果与讨论 | 第28-54页 |
| 3.1 腐败菌株筛选与鉴定 | 第28-32页 |
| 3.1.1 腐败菌的菌落特征 | 第28-29页 |
| 3.1.2 单菌落DNA的提取 | 第29页 |
| 3.1.3 16S rDNA序列系统发育分析 | 第29-30页 |
| 3.1.4 腐败菌生理生化鉴定分析 | 第30-32页 |
| 3.2 生物防腐剂抑菌研究 | 第32-41页 |
| 3.2.1 生物防腐剂筛选 | 第32-40页 |
| 3.2.2 生物防腐剂应用于样品中抑菌效果 | 第40-41页 |
| 3.3 生物防腐剂复配 | 第41-46页 |
| 3.4 复配生物防腐剂作用效果 | 第46-50页 |
| 3.4.1 扫描电镜观察 | 第47页 |
| 3.4.2 鱼肉样品感官变化 | 第47-48页 |
| 3.4.3 鱼肉样品菌落总数变化 | 第48-49页 |
| 3.4.4 鱼肉样品pH值变化 | 第49页 |
| 3.4.5 鱼肉样品TVB-N值变化 | 第49-50页 |
| 3.5 复配生物防腐剂对海鲶鱼肉腐败过程中细菌菌群组成的影响 | 第50-54页 |
| 4 结论 | 第54-55页 |
| 5 展望 | 第55-56页 |
| 6 参考文献 | 第56-63页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第63-64页 |
| 8 致谢 | 第64页 |