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啤酒花化学成分及黄腐酚提纯技术的研究

摘要第1-16页
ABSTRACT第16-20页
第一章 文献综述第20-41页
 1 啤酒花概述第20-21页
 2 啤酒花化学成分的研究状况第21-34页
  2.1 酒花树脂化学成分的研究第21-23页
   2.1.1 酒花树脂化学成分的组成及性质第21-22页
   2.1.2 α—酸和β—酸的化学反应第22-23页
    2.1.2.1 α—酸的异构化第22-23页
    2.1.2.2 α—酸和β—酸的氧化第23页
    2.1.2.3 α—酸和β3—酸加氢反应第23页
  2.2 酒花挥发性化学成分的研究第23-27页
   2.2.1 碳氢化合物第24页
   2.2.2 含氧化合物第24-27页
    2.2.2.1 醇类化合物第25页
    2.2.2.2 醛类化合物第25页
    2.2.2.3 酸类化合物第25-26页
    2.2.2.4 酮类化合物第26页
    2.2.2.5 酯类化合物第26-27页
    2.2.2.6 环氧类化合物第27页
   2.2.3 含硫化合物第27页
  2.3 酒花多酚类化合物的研究第27-29页
  2.4 酒花黄酮类化合物的研究第29-34页
   2.4.1 酒花黄酮类化合物的组成第29-32页
   2.4.2 酒花异戊烯基黄酮类化合物的提取、分离和结构鉴定第32页
   2.4.3 酒花黄酮类化合物生物活性的研究第32-34页
    2.4.3.1 抗增殖效果第32-33页
    2.4.3.2 抗癌变效果第33-34页
    2.4.3.3 其它生物活性第34页
 3 选题依据及本研究的主要内容第34-35页
 主要参考文献第35-41页
第二章 啤酒花基本化学成分分析第41-54页
 1 引言第41-42页
 2 材料与方法第42-47页
  2.1 材料第42-43页
   2.1.1 实验材料第42页
   2.1.2 实验药品第42页
   2.1.3 主要仪器与设备第42-43页
  2.2 方法第43-47页
   2.2.1 啤酒花中化学成分在不同极性溶剂中的定量分布第43页
   2.2.2 啤酒花中化学成分的定性检识第43-44页
    2.2.2.1 黄酮类化合物的检识第43页
    2.2.2.2 多酚类化合物的检识第43页
    2.2.2.3 蒽醌类化合物的检识第43页
    2.2.2.4 氨基酸及肽类化合物的检识第43-44页
    2.2.2.5 有机酸的检识第44页
    2.2.2.6 强心甙、甾体皂甙、三萜皂甙的检识第44页
    2.2.2.7 生物碱的检识第44页
   2.2.3 啤酒花基本化学成分分析第44-47页
    2.2.3.1 水分测定第44页
    2.2.3.2 水浸出物测定第44-45页
    2.2.3.3 水溶性总糖测定第45页
    2.2.3.4 水溶性还原糖测定第45页
    2.2.3.5 水溶性蛋白质的测定第45页
    2.2.3.6 游离氨基酸总量测定第45页
    2.2.3.7 水溶性黄酮类化合物的测定第45-46页
    2.2.3.8 多酚类物质总量测定第46页
    2.2.3.9 黄酮类物质总量测定第46页
    2.2.3.10 总蛋白含量测定第46-47页
    2.2.3.11 总灰分测定第47页
    2.2.3.12 水溶性灰分和水不溶性灰分测定第47页
    2.2.3.13 α-酸和β-酸的测定第47页
 3 结果与分析第47-51页
  3.1 香型和苦型啤酒花化学成分在不同极性溶剂中的定量分布第47-48页
  3.2 啤酒花化学成分的定性检识第48-50页
  3.3 啤酒花基本化学成分分析第50-51页
   3.3.1 水浸出物总量、水溶性总糖、还原糖第50-51页
   3.3.2 总蛋白、水溶性蛋白、游离氨基酸总量第51页
   3.3.3 总灰分、水溶性灰分、水不溶性灰分第51页
   3.3.4 多酚类化合物总量、黄酮类化合物总量、水溶性黄酮第51页
   3.3.5 α-酸和β-酸第51页
 4 讨论与结论第51-52页
 主要参考文献第52-54页
第三章 啤酒花多酚类化合物提取工艺的优化研究第54-64页
 1 引言第54-55页
 2 材料与方法第55-56页
  2.1 材料第55页
   2.1.1 实验材料第55页
   2.1.2 实验药品第55页
   2.1.3 主要仪器与设备第55页
  2.2 方法第55-56页
   2.2.1 样品处理第55页
   2.2.2 多酚总量测定方法第55页
   2.2.3 啤酒花多酚的提取流程第55-56页
   2.2.4 提取条件优化第56页
   2.2.5 数据分析方法第56页
 3 结果与分析第56-62页
  3.1 不同提取溶剂对啤酒花多酚提取效果的影响第56-57页
  3.2 析因实验设计和结果第57-59页
  3.3 最速上升实验及结果第59页
  3.4 中心组合(CCD)实验结果第59-62页
 4 讨论与结论第62页
 主要参考文献第62-64页
第四章 啤酒花黄酮类化合物溶剂提取条件的优化研究第64-75页
 1 引言第64-65页
 2 材料与方法第65-67页
  2.1 材料第65页
   2.1.1 实验材料第65页
   2.1.2 实验药品第65页
   2.1.3 主要仪器与设备第65页
  2.2 方法第65-67页
   2.2.1 实验样品处理方法第65-66页
   2.2.2 总黄酮测定方法第66页
   2.2.3 啤酒花总黄酮的提取流程第66页
   2.2.4 提取条件优化第66页
   2.2.5 数据分析方法第66-67页
 3 结果与分析第67-73页
  3.1 对啤酒花黄酮提取效果影响的单因素分析第67-69页
   3.1.1 乙醇浓度对啤酒花黄酮提取效果的影响第67页
   3.1.2 料液比对啤酒花黄酮提取效果的影响第67-68页
   3.1.3 提取时间对啤酒花黄酮提取效果的影响第68-69页
   3.1.4 提取温度对啤酒花黄酮提取效果的影响第69页
  3.2 正交实验结果第69-70页
  3.3 中心组合(CCD)实验结果第70-73页
 4 讨论与结论第73页
 主要参考文献第73-75页
第五章 啤酒花挥发性化学成分的研究第75-91页
 1 引言第75-76页
 2 材料与方法第76-78页
  2.1 材料第76页
   2.1.1 实验材料第76页
   2.1.2 实验药品第76页
   2.1.3 主要仪器与设备第76页
  2.2 方法第76-78页
   2.2.1 实验样品处理方法第76-77页
   2.2.2 啤酒花挥发油提取方法第77页
    2.2.2.1 啤酒花挥发油水蒸气提取第77页
    2.2.2.2 啤酒花挥发油的有机溶剂提取第77页
    2.2.2.3 啤酒花挥发油的超临界CO2萃取第77页
   2.2.3 啤酒花挥发油检测方法—GC/MS/DS联用技术第77-78页
    2.2.3.1 色谱条件第77-78页
    2.2.3.2 质谱条件第78页
    2.2.3.3 定性定量分析第78页
 3 结果与分析第78-88页
  3.1 啤酒花挥发性成分的组成第78-88页
  3.2 三种提取方法提取的出的酒花挥发性成分的比较第88页
 4 讨论与结论第88-89页
 主要参考文献第89-91页
第六章 啤酒花有效成分的超临界流体萃取第91-114页
 1 引言第91-92页
 2 材料与方法第92-97页
  2.1 材料第92-93页
   2.1.1 实验材料第92页
   2.1.2 实验药品第92页
   2.1.3 主要仪器与设备第92-93页
  2.2 方法第93-97页
   2.2.1 实验样品处理方法第93页
   2.2.2 超临界流体萃取啤酒花有效成分的工艺流程第93页
   2.2.3 啤酒花树脂、酒花油的超临界CO2萃取的压力和温度试验第93-94页
    2.2.3.1 啤酒花树脂、酒花油的超临界CO2萃取的压力试验第93-94页
    2.2.3.2 啤酒花树脂、酒花油的超临界CO2萃取的温度试验第94页
    2.2.3.3 啤酒花树脂、酒花油的超临界CO2萃取第94页
   2.2.4 啤酒花总黄酮的提取第94-95页
    2.2.4.1 溶剂法提取啤酒花总黄酮第94页
    2.2.4.2 超临界流体法萃取啤酒花总黄酮第94-95页
   2.2.5 超临界CO2萃取物有效成分分析第95页
    2.2.5.1 总得率的计算第95页
    2.2.5.2 α-酸、β-酸含量分析第95页
    2.2.5.3 酒花油的分析第95页
   2.2.6 黄酮类化合物含量分析第95页
   2.2.7 溶剂法提取啤酒花总黄酮(E2)与超临界流体法萃取啤酒花总黄酮(E3)对比分析第95-97页
    2.2.7.1 薄层层析(TLC)分析第95页
    2.2.7.2 高效液相色谱(HPLC)分析第95-96页
    2.2.7.3 液相色谱-质谱(LC-MS)联用分析第96-97页
     2.2.7.3.1 LC-ESI-MS分析第96页
     2.2.7.3.2 LC-APCI-MS分析第96-97页
 3 结果与分析第97-109页
  3.1 压力和温度对啤酒花树脂、酒花油超临界CO2萃取效果的影响第97-98页
   3.1.1 压力对超临界CO2萃取效果的影响第97-98页
   3.1.2 温度对超临界CO2萃取效果的影响第98页
  3.2 超临界流体法萃取啤酒花总黄酮第98-103页
   3.2.1 超临界流体法萃取啤酒花总黄酮的单因素试验结果及分析第98-102页
    3.2.1.1 乙醇浓度对啤酒花总黄酮提取效果的影响第98-99页
    3.2.1.2 夹带济添加量(料液比)对啤酒花总黄酮提取效果的影响第99-100页
    3.2.1.3 萃取温度对啤酒花总黄酮提取效果的影响第100-101页
    3.2.1.4 萃取压力对啤酒花总黄酮提取效果的影响第101-102页
   3.2.2 超临界流体法萃取啤酒花总黄酮的正交试验结果及分析第102-103页
  3.3 超临界CO2萃取物有效成分(E_1)分析第103页
  3.4 萃取物E_2及E_3黄酮类化合物的对比分析第103-109页
   3.4.1 TLC分析第103-104页
   3.4.2 HPLC分析第104-106页
   3.4.3 LC-ESI-MS和LC-APCI-MS分析第106-109页
 4 讨论与结论第109-110页
  4.1 超临界CO2萃取啤酒花有效成分第109页
  4.2 超临界流体(添加乙醇)萃取啤酒花废弃物中黄酮类化合物第109-110页
 主要参考文献第110-114页
第七章 高速逆流色谱提纯黄腐酚第114-136页
 1 引言第114-115页
 2 材料与方法第115-121页
  2.1 材料第115-116页
   2.1.1 实验材料第115页
   2.1.2 实验药品第115-116页
   2.1.3 主要仪器与设备第116页
  2.2 方法第116-121页
   2.2.1 黄腐酚的初步分离与检测方法第116-117页
    2.2.1.1 柱层析及紫外检测第116-117页
    2.2.1.2 薄层层析及喷雾显色、紫外检测第117页
    2.2.1.3 高效液相色谱分离第117页
   2.2.2 高速逆流色谱溶剂系统选择第117-119页
    2.2.2.1 TLC法初步筛选溶剂系统第118-119页
    2.2.2.2 HPLC法测定分配系数第119页
   2.2.3 高速逆流色谱操作体系参数选择与测定第119-120页
    2.2.3.1 固定相与流动相的选择第119页
    2.2.3.2 固定相保留值测定第119页
    2.2.3.3 进样量对分离结果的影响第119-120页
    2.2.3.4 流速对分离结果的影响第120页
   2.2.4 高速逆流色谱分离的目标化合物—黄腐酚的鉴定第120-121页
    2.2.4.1 HPLC鉴定其纯度第120页
    2.2.4.2 紫外扫描第120页
    2.2.4.3 LC-APCI-MS测定其分子量第120-121页
 3 结果与分析第121-129页
  3.1 黄腐酚的初步分离与检测第121-123页
   3.1.1 柱层析及紫外检测结果第121页
   3.1.2 薄层层析及喷雾显色、紫外检测结果第121-122页
   3.1.3 高效液相色谱分离结果第122-123页
  3.2 高速逆流色谱溶剂系统选择第123-126页
   3.2.1 TLC法初步筛选溶剂系统结果第124页
   3.2.2 HPLC法测定分配系数第124-126页
  3.3 高速逆流色谱操作体系参数选择与测定第126-128页
   3.3.1 固定相保留值第126-127页
   3.3.2 进样量对分离结果影响第127页
   3.3.3 流速对分离结果影响第127-128页
  3.4 目标化合物—黄腐酚的鉴定第128-129页
   3.4.1 HPLC鉴定黄腐酚纯度第128页
   3.4.2 紫外分析第128-129页
   3.4.3 LC-APCI-MS结果第129页
 4 讨论与结论第129-132页
  4.1 黄腐酚的检识与判断第129-130页
  4.2 HSCCC分离、提纯黄腐酚第130-132页
 主要参考文献第132-136页
第八章 主要结论第136-141页
致谢第141-142页
个人简介第142页

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