| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-29页 |
| 1.1 冷冻鱼糜 | 第14-19页 |
| 1.1.1 鱼糜蛋白冷冻变性机理 | 第14-16页 |
| 1.1.2 鱼糜蛋白冷冻变性的研究进展 | 第16-19页 |
| 1.2 超声波辅助冷冻 | 第19-24页 |
| 1.2.1 超声波概述 | 第19页 |
| 1.2.2 超声效应 | 第19-21页 |
| 1.2.3 超声波辅助冷冻机理 | 第21-22页 |
| 1.2.4 超声波辅助冷冻研究进展 | 第22-24页 |
| 1.3 水溶性大豆多糖的研究进展 | 第24-26页 |
| 1.3.1 水溶性大豆多糖的组成与结构 | 第24页 |
| 1.3.2 水溶性大豆多糖的理化性质 | 第24-25页 |
| 1.3.3 水溶性大豆多糖在冷冻食品中的应用 | 第25-26页 |
| 1.4 本论文的研究意义及研究内容 | 第26-29页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第26-27页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第27-28页 |
| 1.4.3 研究路线 | 第28-29页 |
| 第二章 超声辅助浸渍冷冻草鱼鱼糜的研究 | 第29-45页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第29-32页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第29页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第29-30页 |
| 2.2.3 超声辅助浸渍冷冻实验平台 | 第30-32页 |
| 2.3 实验方法 | 第32-34页 |
| 2.3.1 鱼糜样品的制备 | 第32页 |
| 2.3.2 超声波辅助冷冻鱼糜中超声参数的选择 | 第32-33页 |
| 2.3.3 鱼糜肌原纤维蛋白溶液的制备及测定 | 第33-34页 |
| 2.3.4 数据分析 | 第34页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第34-43页 |
| 2.4.1 超声功率对草鱼鱼糜冷冻的影响 | 第34-37页 |
| 2.4.2 超声工作时间对草鱼鱼糜冷冻的影响 | 第37-39页 |
| 2.4.3 超声间隔时间对草鱼鱼糜冷冻的影响 | 第39-41页 |
| 2.4.4 超声次数对草鱼鱼糜冷冻的影响 | 第41-43页 |
| 2.4.5 超声波影响草鱼鱼糜肌原纤维蛋白含量的原因 | 第43页 |
| 2.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第三章 水溶性大豆多糖对浸渍冷冻草鱼鱼糜的影响 | 第45-67页 |
| 3.1 引言 | 第45页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第45-47页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第45-46页 |
| 3.2.2 实验仪器与设备 | 第46-47页 |
| 3.3 实验内容与方法 | 第47-51页 |
| 3.3.1 鱼糜样品的制备 | 第47页 |
| 3.3.2 鱼糜肌原纤维蛋白溶液的制备及测定 | 第47页 |
| 3.3.3 鱼糜肌原纤维蛋白Ca~(2+)-ATPase活性的检测 | 第47-48页 |
| 3.3.4 总巯基含量的测定 | 第48-49页 |
| 3.3.5 活性巯基含量的测定 | 第49页 |
| 3.3.6 盐溶性蛋白含量的测定 | 第49页 |
| 3.3.7 白度的测定 | 第49-50页 |
| 3.3.8 持水性的测定 | 第50页 |
| 3.3.9 分子量的测定 | 第50-51页 |
| 3.3.10 傅里叶红外光谱(FTIR)分析 | 第51页 |
| 3.3.11 数据分析 | 第51页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第51-66页 |
| 3.4.1 水溶性大豆多糖对鱼糜浸渍冷冻过程的影响 | 第51-53页 |
| 3.4.2 水溶性大豆多糖对浸渍冷冻鱼糜Ca~(2+)-ATPase活性的影响 | 第53-55页 |
| 3.4.3 水溶性大豆多糖对浸渍冷冻鱼糜总巯基含量的影响 | 第55-57页 |
| 3.4.4 水溶性大豆多糖对浸渍冷冻鱼糜活性巯基含量的影响 | 第57-58页 |
| 3.4.5 水溶性大豆多糖对浸渍冷冻鱼糜盐溶蛋白含量的影响 | 第58-60页 |
| 3.4.6 水溶性大豆多糖对浸渍冷冻鱼糜白度的影响 | 第60-61页 |
| 3.4.7 水溶性大豆多糖对浸渍冷冻鱼糜持水性的影响 | 第61-63页 |
| 3.4.8 水溶性大豆多糖影响冷冻鱼糜蛋白变性的分子结构分析 | 第63-66页 |
| 3.5 本章小结 | 第66-67页 |
| 第四章 超声波协同水溶性大豆多糖冷冻草鱼鱼糜的研究 | 第67-81页 |
| 4.1 引言 | 第67页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第67-68页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第67页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第67-68页 |
| 4.3 实验内容与方法 | 第68-69页 |
| 4.3.1 鱼糜样品的制备 | 第68页 |
| 4.3.2 鱼糜肌原纤维蛋白溶液的制备及测定 | 第68页 |
| 4.3.3 鱼糜肌原纤维蛋白Ca~(2+)-ATPase活性的检测 | 第68页 |
| 4.3.4 总巯基含量的测定 | 第68页 |
| 4.3.5 活性巯基含量的测定 | 第68页 |
| 4.3.6 盐溶性蛋白含量的测定 | 第68页 |
| 4.3.7 白度的测定 | 第68-69页 |
| 4.3.8 持水性的测定 | 第69页 |
| 4.3.9 数据分析 | 第69页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第69-80页 |
| 4.4.1 水溶性大豆多糖对鱼糜超声辅助浸渍冷冻过程的影响 | 第69-71页 |
| 4.4.2 水溶性大豆多糖对超声辅助浸渍冷冻鱼糜Ca~(2+)-ATPase活性的影响 | 第71-72页 |
| 4.4.3 水溶性大豆多糖对超声辅助浸渍冷冻鱼糜总巯基含量的影响 | 第72-74页 |
| 4.4.4 水溶性大豆多糖对超声辅助浸渍冷冻鱼糜活性巯基含量的影响 | 第74-76页 |
| 4.4.5 水溶性大豆多糖对超声辅助浸渍冷冻鱼糜盐溶蛋白含量的影响 | 第76-77页 |
| 4.4.6 水溶性大豆多糖对超声辅助浸渍冷冻鱼糜白度的影响 | 第77-78页 |
| 4.4.7 水溶性大豆多糖对超声辅助浸渍冷冻鱼糜持水性的影响 | 第78-80页 |
| 4.4.8 超声波协同水溶性大豆多糖影响冷冻鱼糜蛋白质变性的机制 | 第80页 |
| 4.5 本章小结 | 第80-81页 |
| 第五章 水溶性大豆多糖复合抗冻剂的研究 | 第81-94页 |
| 5.1 引言 | 第81页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第81-82页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第81-82页 |
| 5.2.2 实验仪器与设备 | 第82页 |
| 5.3 实验内容与方法 | 第82-83页 |
| 5.3.1 鱼糜样品的制备 | 第82页 |
| 5.3.2 鱼糜肌原纤维蛋白溶液的制备及测定 | 第82页 |
| 5.3.3 鱼糜肌原纤维蛋白Ca~(2+)-ATPase活性的检测 | 第82页 |
| 5.3.4 总巯基含量的测定 | 第82页 |
| 5.3.5 活性巯基含量的测定 | 第82页 |
| 5.3.6 盐溶性蛋白含量的测定 | 第82-83页 |
| 5.3.7 白度的测定 | 第83页 |
| 5.3.8 持水性的测定 | 第83页 |
| 5.3.9 数据分析 | 第83页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第83-93页 |
| 5.4.1 不同抗冻剂对鱼糜冷冻过程的影响 | 第83-85页 |
| 5.4.2 不同抗冻剂对冷冻鱼糜Ca~(2+)-ATPase活性的影响 | 第85-86页 |
| 5.4.3 不同抗冻剂对冷冻鱼糜总巯基含量的影响 | 第86-88页 |
| 5.4.4 不同抗冻剂对冷冻鱼糜活性巯基含量的影响 | 第88-89页 |
| 5.4.5 不同抗冻剂对冷冻鱼糜盐溶蛋白含量的影响 | 第89-91页 |
| 5.4.6 不同抗冻剂对冷冻鱼糜白度的影响 | 第91-92页 |
| 5.4.7 不同抗冻剂对冷冻鱼糜持水性的影响 | 第92-93页 |
| 5.5 本章小结 | 第93-94页 |
| 结论与展望 | 第94-97页 |
| 一、结论 | 第94-95页 |
| 二、创新点 | 第95-96页 |
| 三、展望 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-110页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 附件 | 第112页 |
