| 缩略词表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第一章 前言 | 第12-29页 |
| 1.1 豆豉研究概况 | 第12-23页 |
| 1.1.1 豆豉的起源 | 第12页 |
| 1.1.2 豆豉的分类 | 第12-17页 |
| 1.1.3 豆豉的营养价值及功能 | 第17-18页 |
| 1.1.4 研究现状 | 第18-23页 |
| 1.2 食品中的生物胺 | 第23-26页 |
| 1.2.1 生物胺的概述 | 第23-24页 |
| 1.2.2 生物胺的来源 | 第24-25页 |
| 1.2.3 生物胺与人类健康 | 第25页 |
| 1.2.4 生物胺的控制 | 第25-26页 |
| 1.3 生物胺氧化酶与生物胺的关系 | 第26-27页 |
| 1.4 研究的目的和意义 | 第27-29页 |
| 第二章 豆豉中胺氧化酶的提取及酶活力动态变化检测 | 第29-39页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第29-32页 |
| 2.1.1 材料 | 第29-31页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-34页 |
| 2.2.1 工厂化发酵生产豆豉 | 第32页 |
| 2.2.2 样品采集 | 第32页 |
| 2.2.3 生物胺氧化酶的粗提 | 第32-33页 |
| 2.2.4 粗酶活性的测定 | 第33-34页 |
| 2.3 结果与分析 | 第34-38页 |
| 2.3.1 豆豉样本 | 第34-35页 |
| 2.3.2 发酵豆豉AMO活性 | 第35-38页 |
| 2.4 结论 | 第38-39页 |
| 第三章 胺氧化酶的表达及酶活性的研究 | 第39-64页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第39-43页 |
| 3.1.1 材料 | 第39-43页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-50页 |
| 3.2.1 菌落PCR检测 | 第44页 |
| 3.2.2 提取质粒DNA | 第44-45页 |
| 3.2.3 质粒PCR检测 | 第45页 |
| 3.2.4 双酶切鉴定重组质粒 | 第45-46页 |
| 3.2.5 重组质粒转化表达菌株 | 第46-47页 |
| 3.2.6 原核诱导表达及可溶性分析 | 第47页 |
| 3.2.7 包涵体的变性复性和纯化 | 第47-48页 |
| 3.2.8 BCA法测定蛋白质浓度 | 第48页 |
| 3.2.9 蛋白的活性检测 | 第48-49页 |
| 3.2.10 MAO活性测定 | 第49-50页 |
| 3.3 结果与分析 | 第50-62页 |
| 3.3.1 菌落PCR检测 | 第50页 |
| 3.3.2 质粒PCR检测重组子pET28a-YobN | 第50-51页 |
| 3.3.3 重组表达载体pET28a-YobN酶切 | 第51-52页 |
| 3.3.4 重组子转化及菌落PCR菌株 | 第52页 |
| 3.3.5 质粒PCR检测 | 第52-53页 |
| 3.3.6 重组蛋白诱导表达 | 第53-54页 |
| 3.3.7 重组蛋白可溶性分析 | 第54-55页 |
| 3.3.8 包涵体的复性与蛋白的纯化和分析 | 第55页 |
| 3.3.9 蛋白浓度测定标准曲线 | 第55-56页 |
| 3.3.10 酶活测定标准曲线 | 第56-57页 |
| 3.3.11 单因素作用对酶活影响 | 第57-62页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第62-64页 |
| 第四章 结论与展望 | 第64-66页 |
| 4.1 结论 | 第64-65页 |
| 4.2 展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 附录 | 第73-74页 |