| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-28页 |
| 1.1 硒概述 | 第16-22页 |
| 1.1.1 硒元素 | 第16-17页 |
| 1.1.2 硒蛋白 | 第17-18页 |
| 1.1.3 硒的摄入量与硒营养补充 | 第18-20页 |
| 1.1.4 硒的吸收代谢和生物利用率 | 第20-21页 |
| 1.1.5 硒与肝脏疾病 | 第21页 |
| 1.1.6 富硒农产品产业 | 第21-22页 |
| 1.2 酒精肝损伤 | 第22-25页 |
| 1.2.1 酒精肝损伤 | 第22页 |
| 1.2.2 酒精肝损伤的治疗 | 第22-23页 |
| 1.2.3 酒精肝损伤的发病机制 | 第23-24页 |
| 1.2.4 酒精肝与肠道菌群 | 第24-25页 |
| 1.3 立题依据 | 第25-26页 |
| 1.4 研究内容和技术路线 | 第26-28页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第26页 |
| 1.4.2 技术路线 | 第26-28页 |
| 第二章 硒富集与相关营养成分的关系 | 第28-49页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-29页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第29-30页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-36页 |
| 2.3.1 硒含量测定 | 第30-31页 |
| 2.3.2 有机硒含量测定 | 第31-33页 |
| 2.3.3 基本营养成分测定 | 第33页 |
| 2.3.4 氨基酸组成分析 | 第33-34页 |
| 2.3.5 矿物质含量分析 | 第34-35页 |
| 2.3.6 蛋白分子量分布 | 第35页 |
| 2.3.7 抗氧化活性测定 | 第35-36页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第36-47页 |
| 2.4.1 不同花生硒富集程度 | 第36-41页 |
| 2.4.2 花生硒富集对基本营养成分积累的影响 | 第41-42页 |
| 2.4.3 花生硒富集对矿物质积累的影响 | 第42-43页 |
| 2.4.4 花生硒富集对氨基酸组成的影响 | 第43-44页 |
| 2.4.5 花生硒富集对其蛋白分子量分布的影响 | 第44-45页 |
| 2.4.6 花生硒富集对其抗氧化活性的影响 | 第45-47页 |
| 2.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 第三章 富硒花生蛋白制备工艺优化 | 第49-66页 |
| 3.1 实验材料 | 第50页 |
| 3.2 实验试剂与仪器 | 第50-51页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第50页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第50-51页 |
| 3.3 实验方法 | 第51-53页 |
| 3.3.1 花生不同部位样品制备 | 第51页 |
| 3.3.2 富硒花生脱脂粉的制备 | 第51页 |
| 3.3.3 富硒花生不同溶解性粗蛋白的提取 | 第51-52页 |
| 3.3.4 富硒花生不同溶解性粗蛋白抗氧化活性比较 | 第52页 |
| 3.3.5 富硒花生蛋白的制备工艺优化 | 第52页 |
| 3.3.6 富硒花生蛋白制备过程中硒损失规律 | 第52-53页 |
| 3.3.7 体外生物利用率评价 | 第53页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第53-65页 |
| 3.4.1 硒在富硒花生不同部位中的分布 | 第53页 |
| 3.4.2 富硒花生脱脂工艺优化 | 第53-55页 |
| 3.4.3 富硒花生不同溶解性粗蛋白制备及性质探究 | 第55-56页 |
| 3.4.4 富硒花生不同溶解性粗蛋白的抗氧化活性研究 | 第56-57页 |
| 3.4.5 富硒花生蛋白制备工艺优化 | 第57-63页 |
| 3.4.6 富硒花生蛋白制备过程中硒损失规律 | 第63-64页 |
| 3.4.7 富硒花生蛋白体外生物利用率评价 | 第64-65页 |
| 3.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 第四章 富硒花生蛋白和硒化合物对小鼠酒精肝损伤的作用 | 第66-92页 |
| 4.1 实验材料 | 第66-67页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第66-67页 |
| 4.1.2 实验材料 | 第67页 |
| 4.2 实验试剂与仪器 | 第67-68页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第67页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第67-68页 |
| 4.3 实验方法 | 第68-71页 |
| 4.3.1 动物喂养 | 第68-69页 |
| 4.3.2 体重、进食量测定 | 第69页 |
| 4.3.3 肝脏系数测定 | 第69页 |
| 4.3.4 血生化、血常规指标测定 | 第69页 |
| 4.3.5 血清谷胱甘肽过氧化物酶活力测定 | 第69页 |
| 4.3.6 血清胰岛素含量的测定 | 第69页 |
| 4.3.7 肝脏氧化应激 | 第69-70页 |
| 4.3.8 肠道微生物多样性 | 第70-71页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第71-90页 |
| 4.4.1 SePP、SC对小鼠体重和摄食量影响 | 第71-72页 |
| 4.4.2 SePP、SC对肝脏系数的影响 | 第72-73页 |
| 4.4.3 SePP、SC对小鼠血生化指标的影响 | 第73-74页 |
| 4.4.4 SePP、SC对小鼠血常规指标的影响 | 第74页 |
| 4.4.5 SePP、SC对血清GPx活力影响 | 第74-77页 |
| 4.4.6 SePP、SC对小鼠血清胰岛素水平影响 | 第77-78页 |
| 4.4.7 SePP、SC对小鼠肝脏氧化应激影响 | 第78-82页 |
| 4.4.8 SePP、SC对小鼠肠道微生物多样性的影响 | 第82-90页 |
| 4.5 本章小结 | 第90-92页 |
| 第五章 富硒花生蛋白对酒精诱导的肝细胞损伤保护作用机制 | 第92-111页 |
| 5.1 实验材料 | 第92页 |
| 5.1.1 实验细胞 | 第92页 |
| 5.1.2 实验材料 | 第92页 |
| 5.2 实验试剂与仪器 | 第92-94页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第92-93页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第93-94页 |
| 5.3 实验方法 | 第94-98页 |
| 5.3.1 细胞培养方法 | 第94页 |
| 5.3.2 细胞存活率的测定 | 第94页 |
| 5.3.3 细胞凋亡检测 | 第94页 |
| 5.3.4 半胱氨酸蛋白酶-3活性测定 | 第94-95页 |
| 5.3.5 酒精代谢酶活力测定 | 第95页 |
| 5.3.6 ROS测定 | 第95页 |
| 5.3.7 线粒体膜电位测定 | 第95页 |
| 5.3.8 线粒体GSH含量测定 | 第95页 |
| 5.3.9 Western Blot检测 | 第95-98页 |
| 5.3.10 数据统计及分析方法 | 第98页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第98-109页 |
| 5.4.1 SePP、SeMet对细胞存活率影响 | 第98-99页 |
| 5.4.2 SePP、SeMet对细胞凋亡影响 | 第99-100页 |
| 5.4.3 SePP、SeMet对Caspase-3活力影响 | 第100-101页 |
| 5.4.4 SePP、SeMet对酒精代谢酶活力影响 | 第101-103页 |
| 5.4.5 SePP、SeMet对ROS水平影响 | 第103-104页 |
| 5.4.6 SePP、SeMet对线粒体膜电位影响 | 第104-105页 |
| 5.4.7 SePP、SeMet对线粒体GSH含量影响 | 第105页 |
| 5.4.8 Nrf-2信号通路在SePP、SeMet对AML-12保护中的作用 | 第105-108页 |
| 5.4.9 SePP对细胞保护作用机制解析 | 第108-109页 |
| 5.5 本章小结 | 第109-111页 |
| 第六章 全文总结和展望 | 第111-114页 |
| 6.1 全文总结 | 第111-112页 |
| 6.2 创新点 | 第112页 |
| 6.3 展望 | 第112-114页 |
| 参考文献 | 第114-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 个人简介 | 第133-134页 |
