致谢 | 第9-10页 |
摘要 | 第10-12页 |
ABSTRACT | 第12-14页 |
第一章 前言 | 第22-31页 |
1.1 研究背景 | 第22-23页 |
1.2 DNJ的简介、功能及研究进展 | 第23-25页 |
1.2.1 DNJ与糖代谢 | 第23-24页 |
1.2.2 DNJ与脂质代谢 | 第24页 |
1.2.3 DNJ抑制病毒的作用 | 第24页 |
1.2.4 DNJ抑制肿瘤转移的作用 | 第24-25页 |
1.2.5 DNJ的抗衰老作用 | 第25页 |
1.3 DNJ的来源及进展 | 第25-27页 |
1.3.1 从动植物体内提取 | 第25-26页 |
1.3.2 人工合成 | 第26-27页 |
1.3.3 从微生物发酵液中提取 | 第27页 |
1.4 营养基因组学及小鼠模型介绍 | 第27-28页 |
1.5 研究意义与内容 | 第28-31页 |
1.5.1 研究意义 | 第28页 |
1.5.2 研究内容 | 第28-31页 |
第二章 桑叶DNJ对db/db小鼠血糖血脂的影响 | 第31-42页 |
2.1 材料 | 第31-32页 |
2.1.1 桑叶及实验动物 | 第31页 |
2.1.2 主要试剂 | 第31页 |
2.1.3 主要仪器与设备 | 第31-32页 |
2.2 实验方法 | 第32-34页 |
2.2.1 DNJ的提取及纯度检测 | 第32页 |
2.2.2 动物饲养、给药及处理 | 第32-33页 |
2.2.3 体重、血糖和血清胰岛素检测 | 第33页 |
2.2.4 血清的生化制备检测 | 第33-34页 |
2.2.5 组织样品的H&E染色分析 | 第34页 |
2.2.6 数据处理方法 | 第34页 |
2.3 结果与分析 | 第34-39页 |
2.3.1 DNJ制备纯度检测 | 第34页 |
2.3.2 DNJ对小鼠体重、血糖、胰岛素及胰岛素敏感性的影响 | 第34-36页 |
2.3.3 DNJ对小鼠血脂的影响 | 第36-37页 |
2.3.4 DNJ对小鼠血清MDA及AGEs的影响 | 第37-38页 |
2.3.5 DNJ对肝肾功能的影响 | 第38页 |
2.3.6 DNJ对肝细胞结构的影响 | 第38-39页 |
2.4 本章讨论与小结 | 第39-42页 |
2.4.1 本章讨论 | 第39-41页 |
2.4.2 本章小结 | 第41-42页 |
第三章 基于肝脏转录组学的DNJ降糖降脂机理 | 第42-74页 |
3.1 材料 | 第42-43页 |
3.1.1 实验动物肝脏 | 第42页 |
3.1.2 主要试剂 | 第42-43页 |
3.1.3 主要仪器与设备 | 第43页 |
3.2 方法 | 第43-47页 |
3.2.1 实验技术流程 | 第43页 |
3.2.2 RNA抽提 | 第43-44页 |
3.2.3 高通量测序RNA的制备及上机测序 | 第44-45页 |
3.2.4 RNA测序原始数据的整理、过滤及质量评估 | 第45页 |
3.2.5 高通量测序数据统计分析方法 | 第45页 |
3.2.6 高通量测序数据的分析 | 第45-46页 |
3.2.7 定量PCR的方法 | 第46-47页 |
3.3 结果与分析 | 第47-72页 |
3.3.1 高通量测序结果 | 第47-51页 |
3.3.2 差异基因分析 | 第51-56页 |
3.3.3 部分主要信号通路分析 | 第56-63页 |
3.3.4 胰岛素分泌途径 | 第63-72页 |
3.4 本章讨论与小结 | 第72-74页 |
3.4.1 本章讨论 | 第72页 |
3.4.2 本章小结 | 第72-74页 |
第四章 基于尿液代谢组学的DNJ降糖降脂机理 | 第74-89页 |
4.1 材料 | 第75-76页 |
4.1.1 实验动物尿液 | 第75页 |
4.1.2 主要试剂 | 第75页 |
4.1.3 主要设备与仪器 | 第75-76页 |
4.2 实验方法 | 第76-77页 |
4.2.1 样品处理方法 | 第76页 |
4.2.2 LC-MS | 第76页 |
4.2.3 数据处理 | 第76页 |
4.2.4 代谢物识别 | 第76-77页 |
4.3 结果与分析 | 第77-87页 |
4.3.1 多变量数据分析 | 第77-84页 |
4.3.2 部分差异物代谢途径分析及功能分析: | 第84-87页 |
4.4 本章讨论与小结 | 第87-89页 |
4.4.1 本章讨论 | 第87-88页 |
4.4.2 本章小结 | 第88-89页 |
第五章 DNJ产生菌的筛选及鉴定 | 第89-107页 |
5.1 材料 | 第89-90页 |
5.1.1 土样及培养基 | 第89页 |
5.1.2 主要试剂 | 第89-90页 |
5.1.3 主要仪器与设备 | 第90页 |
5.2 实验方法 | 第90-95页 |
5.2.1 技术路线 | 第90-91页 |
5.2.2 土样的采集、菌株的分离及发酵液的制备 | 第91页 |
5.2.3 初筛方法 α-葡萄糖淀粉酶抑制剂筛选 | 第91页 |
5.2.4 DNJ产生菌二次筛选 | 第91-92页 |
5.2.5 DNJ产生菌复筛 | 第92页 |
5.2.6 菌株的形态学检查及生理生化实验 | 第92页 |
5.2.7 菌株的分子生物学鉴定 | 第92-93页 |
5.2.8 活性物质的初步确定 | 第93页 |
5.2.9 活性物质发酵的初步优化 | 第93-94页 |
5.2.10 活性物质的分离制备 | 第94-95页 |
5.2.11 产物的结构确认 | 第95页 |
5.3 结果与分析 | 第95-105页 |
5.3.1 菌株分离 | 第95页 |
5.3.2 初筛结果 | 第95-96页 |
5.3.3 DNJ产生菌复筛 | 第96页 |
5.3.4 W642菌株的形态特征 | 第96-97页 |
5.3.5 W642菌株的生理生化特征 | 第97页 |
5.3.6 W642菌株分子生物学鉴定 | 第97-99页 |
5.3.7 W642菌株产生的活性物质的初步分析 | 第99-100页 |
5.3.8 发酵优化结果 | 第100-101页 |
5.3.9 活性物质的纯化及结构分析: | 第101-105页 |
5.4 本章讨论与小结 | 第105-107页 |
5.4.1 本章讨论: | 第105页 |
5.4.2 本章小结: | 第105-107页 |
第六章 结论与展望 | 第107-109页 |
6.1 结论 | 第107-108页 |
6.2 本文创新点 | 第108页 |
6.3 展望 | 第108-109页 |
参考文献 | 第109-120页 |
攻读博士学位期间的学术活动及成果情况 | 第120页 |