摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-11页 |
第一章 引言 | 第14-21页 |
1.1 鱿鱼内脏的利用现状 | 第14-17页 |
1.2 海洋动物内源性蛋白酶的提取及利用现状研究 | 第17-20页 |
1.3 论文研究目的及意义 | 第20页 |
1.4 论文的创新点 | 第20-21页 |
第二章 鱿鱼内脏自溶液的营养评价及体外抗氧化活性 | 第21-31页 |
2.1 材料与试剂 | 第21-22页 |
2.1.1 实验材料 | 第21页 |
2.1.2 主要试剂 | 第21-22页 |
2.2 仪器设备 | 第22页 |
2.3 方法 | 第22-25页 |
2.3.1 鱿鱼内脏自溶液的制备 | 第22-23页 |
2.3.2 蛋白提取率测定 | 第23页 |
2.3.3 可溶性肽含量测定 | 第23页 |
2.3.4 水解度(DH)测定 | 第23页 |
2.3.5 氨基酸组成分析 | 第23-24页 |
2.3.6 SVAs的营养价值评价方法 | 第24页 |
2.3.7 体外抗氧化性测定 | 第24-25页 |
2.4 结果与讨论 | 第25-30页 |
2.4.1 SVAs水解效果评价 | 第25-26页 |
2.4.2 氨基酸组成分析 | 第26-27页 |
2.4.3 SVAs的营养价值评价 | 第27页 |
2.4.4 SVAs的体外抗氧化性 | 第27-30页 |
2.5 本章小结 | 第30-31页 |
第三章 鱿鱼内脏自溶液抗氧化肽的分离与纯化 | 第31-44页 |
3.1 材料与试剂 | 第31-32页 |
3.1.1 实验材料 | 第31页 |
3.1.2 主要试剂 | 第31-32页 |
3.2 仪器设备 | 第32页 |
3.3 实验方法 | 第32-34页 |
3.3.1 凝胶柱层析 | 第32-33页 |
3.3.2 反相高效液相层析(RP-HPLC) | 第33页 |
3.3.3 SVAs3中肽段鉴定 | 第33页 |
3.3.4 合成肽的体外抗氧化活性的测定 | 第33-34页 |
3.4 结果与讨论 | 第34-42页 |
3.4.1 凝胶柱层析 | 第34-35页 |
3.4.2 SVAs3中肽段的鉴定 | 第35-38页 |
3.4.3 合成肽体外抗氧化活性检测 | 第38-42页 |
3.5 本章小结 | 第42-44页 |
第四章 鱿鱼内脏蛋白酶的提取和鉴定 | 第44-53页 |
4.1 材料与试剂 | 第44-45页 |
4.1.1 实验材料 | 第44-45页 |
4.1.2 主要试剂 | 第45页 |
4.2 仪器设备 | 第45-46页 |
4.3 实验方法 | 第46-48页 |
4.3.0 粗酶液的制备 | 第46页 |
4.3.1 ISP法纯化鱿鱼内脏蛋白酶 | 第46-47页 |
4.3.2 蛋白浓度的测定 | 第47页 |
4.3.3 酶活力测定 | 第47页 |
4.3.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳与酶谱图 | 第47-48页 |
4.3.5 蛋白酶的鉴定 | 第48页 |
4.4 结果与讨论 | 第48-52页 |
4.4.1 ISP法提取鱿鱼内脏蛋白酶 | 第48-50页 |
4.4.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳与酶谱图 | 第50-51页 |
4.4.3 鱿鱼内脏蛋白酶的鉴定——UPLC-ESI-MS/MS | 第51-52页 |
4.5 本章小结 | 第52-53页 |
第五章 鱿鱼内脏蛋白酶的部分理化性质及其应用 | 第53-60页 |
5.1 材料与试剂 | 第53-54页 |
5.1.1 实验材料 | 第53页 |
5.1.2 主要试剂 | 第53-54页 |
5.2 仪器设备 | 第54页 |
5.3 实验方法 | 第54-55页 |
5.3.1 鱿鱼内脏蛋白酶最适pH、对pH的稳定性 | 第54页 |
5.3.2 鱿鱼内脏蛋白酶最适温度、对温度的稳定性 | 第54页 |
5.3.3 鱿鱼内脏蛋白酶对盐度的稳定性 | 第54-55页 |
5.3.4 水解度(DH)的测定 | 第55页 |
5.3.5 黄鲫鱼鱼肉蛋白水解液的制备 | 第55页 |
5.3.6 水解液体外抗氧化性试验 | 第55页 |
5.4 结果与讨论 | 第55-59页 |
5.4.1 鱿鱼内脏蛋白酶最适pH、对pH的稳定性 | 第55-56页 |
5.4.2 鱿鱼内脏蛋白酶最适温度、对温度的稳定性 | 第56-57页 |
5.4.3 鱿鱼内脏蛋白酶对盐度的稳定性 | 第57-58页 |
5.4.4 黄鲫鱼水解液的水解度与体外抗氧化活性 | 第58-59页 |
5.5 本章小结 | 第59-60页 |
结论 | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第71页 |