| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-18页 |
| 1.1 EGCG | 第11-12页 |
| 1.1.1 EGCG来源 | 第11页 |
| 1.1.2 EGCG结构 | 第11页 |
| 1.1.3 EGCG基本性质 | 第11-12页 |
| 1.2 癌症 | 第12-13页 |
| 1.3 EGCG与癌症 | 第13-15页 |
| 1.4 细胞氧化逆境 | 第15页 |
| 1.5 细胞抗氧化因子 | 第15-16页 |
| 1.5.1 TrxR | 第15-16页 |
| 1.5.2 GSH/Cys | 第16页 |
| 1.6 EGCG氧化产物 | 第16-18页 |
| 2 引言 | 第18-19页 |
| 3 材料与方法 | 第19-25页 |
| 3.1 材料 | 第19页 |
| 3.1.1 细胞和试剂 | 第19页 |
| 3.1.2 仪器设备 | 第19页 |
| 3.2 方法 | 第19-25页 |
| 3.2.1 EGCG自氧化产物（EGCG auto-oxidation products，EAOPs）的制备 | 第19-20页 |
| 3.2.2 光谱扫描 | 第20页 |
| 3.2.3 HPLC检测 | 第20页 |
| 3.2.4 细胞培养 | 第20-21页 |
| 3.2.5 MTT检测方法 | 第21页 |
| 3.2.6 EGCG/EAOPs抑制癌细胞增殖效应 | 第21页 |
| 3.2.7 EGCG/EAOPs杀伤癌细胞效应 | 第21-22页 |
| 3.2.8 巯基检测方法 | 第22页 |
| 3.2.9 EGCG/EAOPs对巯基的清除作用 | 第22页 |
| 3.2.10 活性氧检测方法 | 第22页 |
| 3.2.11 EGCG/EAOPs产生ROS效应 | 第22-23页 |
| 3.2.12 H2O2检测方法 | 第23页 |
| 3.2.13 EGCG/EAOPs产生H2O2效应 | 第23页 |
| 3.2.14 TrxR活力检测方法 | 第23页 |
| 3.2.15 EGCG/EAOPs抑制TrxR活力效应 | 第23-24页 |
| 3.2.16 数据统计 | 第24-25页 |
| 4 结果 | 第25-35页 |
| 4.1 EAOPs的制备 | 第25页 |
| 4.2 EAOPs在可见及紫外光区的吸收变化 | 第25-26页 |
| 4.3 EAOPs在 278nm处的吸收变化——HPLC检测 | 第26-27页 |
| 4.4 EGCG抑制癌细胞增殖的剂量效应和时间效应 | 第27-28页 |
| 4.5 EAOPs对癌细胞增殖的抑制效应 | 第28页 |
| 4.6 EGCG杀伤癌细胞的剂量效应和时间效应 | 第28-29页 |
| 4.7 EAOPs对癌细胞的杀伤效应 | 第29-30页 |
| 4.8 EGCG和EAOPs对游离巯基的清除效应 | 第30-32页 |
| 4.8.1 EGCG和EAOPs对GSH的清除效应 | 第30-31页 |
| 4.8.2 EGCG和EAOPs对Cys的清除效应 | 第31-32页 |
| 4.9 EGCG和EAOPs抑制TrxR活力的效应 | 第32-33页 |
| 4.10 EGCG和EAOPs产生ROS的效应 | 第33-34页 |
| 4.11 EGCG和EAOPs产生H2O2的效应 | 第34-35页 |
| 5 讨论与结论 | 第35-38页 |
| 参考文献 | 第38-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 作者简介 | 第47页 |
