摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
前言 | 第16-20页 |
第一章 燕麦葡聚糖对DSS诱导小鼠溃疡性结肠炎的抑制作用 | 第20-58页 |
1 研究背景 | 第20-22页 |
1.1 炎症性肠病 | 第20页 |
1.2 溃疡性结肠炎的治疗 | 第20-21页 |
1.3 多糖类物质抗肠炎作用 | 第21页 |
1.4 硫酸葡聚糖钠诱导的小鼠肠炎模型 | 第21页 |
1.5 本章研究思路 | 第21-22页 |
2 材料与方法 | 第22-37页 |
2.1 实验动物 | 第22页 |
2.2 主要试剂 | 第22-24页 |
2.3 主要仪器 | 第24-25页 |
2.4 溶液配制 | 第25-27页 |
2.5 动物实验与分组 | 第27页 |
2.6 病理活动指数(DAI)的评分 | 第27-28页 |
2.7 髓过氧化物酶(MPO)活性检测 | 第28页 |
2.8 丙二醛(MDA)含量检测 | 第28页 |
2.9 一氧化氮(NO)含量 | 第28-29页 |
2.10 组织中总RNA提取 | 第29页 |
2.11 RNA浓度检测 | 第29页 |
2.12 RNA完整性检测 | 第29-30页 |
2.13 cDNA合成 | 第30页 |
2.14 荧光定量PCR反应 | 第30-31页 |
2.15 总蛋白提取 | 第31-32页 |
2.16 BCA法检测蛋白浓度 | 第32页 |
2.17 Western blot | 第32-34页 |
2.18 组织包埋 | 第34-35页 |
2.19 石蜡切片 | 第35页 |
2.20 H&E染色及封片 | 第35-36页 |
2.21 免疫组化 | 第36页 |
2.22 统计学分析 | 第36-37页 |
3 实验结果 | 第37-52页 |
3.1 燕麦葡聚糖缓解DSS诱导小鼠健康状况的评价 | 第37-39页 |
3.2 燕麦葡聚糖对DSS诱导小鼠结肠及脾的影响 | 第39-41页 |
3.3 燕麦葡聚糖对小鼠结肠组织结构的影响 | 第41-42页 |
3.4 燕麦葡聚糖对肠炎小鼠结肠组织生化指标的影响 | 第42-43页 |
3.5 燕麦葡聚糖对DSS诱导小鼠结肠炎症因子mRNA的影响 | 第43-46页 |
3.6 燕麦葡聚糖对DSS诱导小鼠结肠组织炎症因子蛋白表达的影响 | 第46-52页 |
4 讨论 | 第52-56页 |
5 小结 | 第56-58页 |
第二章 燕麦葡聚糖抑制LPS诱导巨噬细胞炎症及其分子机理 | 第58-81页 |
1 研究背景 | 第58-59页 |
1.1 巨噬细胞作为炎症模型的机理 | 第58页 |
1.2 膳食纤维在细胞模型中的应用 | 第58-59页 |
1.3 本章研究思路 | 第59页 |
2 材料与方法 | 第59-68页 |
2.1 实验材料 | 第59-62页 |
2.2 实验方法 | 第62-68页 |
2.3 统计学分析 | 第68页 |
3 实验结果 | 第68-79页 |
3.1 燕麦葡聚糖对LPS诱导的RAW264.7细胞活性的影响 | 第68-69页 |
3.3 燕麦葡聚糖对LPS诱导的RAW264.7炎症基因表达的影响 | 第69-75页 |
3.4 燕麦葡聚糖对LPS诱导的RAW264.7蛋白表达水平的影响 | 第75-79页 |
4 讨论 | 第79-80页 |
5 小结 | 第80-81页 |
第三章 燕麦葡聚糖降脂的功效及其分子机制 | 第81-106页 |
1 前言 | 第81-82页 |
1.1 高脂血症 | 第81页 |
1.2 高脂血症的临床治疗手段 | 第81-82页 |
1.3 燕麦葡聚糖降脂功能 | 第82页 |
2 材料与方法 | 第82-87页 |
2.1 实验材料 | 第82-84页 |
2.2 实验方法 | 第84-87页 |
3 实验结果 | 第87-99页 |
3.1 燕麦葡聚糖对小鼠表型的影响 | 第87-90页 |
3.2 燕麦葡聚糖对血脂水平的影响 | 第90-93页 |
3.3 燕麦葡聚糖对小鼠脏器组织组织形态学的影响 | 第93-94页 |
3.4 燕麦葡聚糖对脂代谢关键基因mRNA表达的影响 | 第94-97页 |
3.5 燕麦葡聚糖抑制炎症因子的表达水平 | 第97-99页 |
4 讨论 | 第99-105页 |
5 小结 | 第105-106页 |
论文创新性 | 第106-107页 |
总结与展望 | 第107-108页 |
参考文献 | 第108-122页 |
附录 综述 | 第122-147页 |
参考文献 | 第130-147页 |
附录 在读期间科研成果 | 第147-150页 |
致谢 | 第150页 |