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改性壳聚糖的微波制备及在饮料中苋菜红检测的应用

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-8页
第1章 引言第14-24页
    1.1 食用合成色素简介第14-18页
        1.1.1 食用合成色素现状第14-15页
        1.1.2 苋菜红的理化性质第15页
        1.1.3 食用合成色素的检测技术第15-18页
    1.2 壳聚糖的研究概况第18-20页
        1.2.1 壳聚糖的基本性质第18-19页
        1.2.2 壳聚糖的改性与接枝第19-20页
        1.2.3 改性壳聚糖吸附性能的研究进展第20页
    1.3 微波在壳聚糖改性方面的应用第20-21页
    1.4 本课题研究意义及内容第21-24页
        1.4.1 研究意义第21-22页
        1.4.2 主要研究内容第22-24页
第2章 改性壳聚糖的微波制备第24-36页
    2.1 引言第24页
    2.2 实验部分第24-25页
        2.2.1 主要仪器装置第24-25页
        2.2.2 主要试剂材料第25页
    2.3 实验方法第25-26页
        2.3.1 改性壳聚糖的微波合成第25-26页
        2.3.2 改性壳聚糖的结构分析与表征第26页
            2.3.2.1 元素分析(EA)第26页
            2.3.2.2 红外光谱分析(FTIR)第26页
            2.3.2.3 热重分析(TGA)第26页
    2.4 结果与讨论第26-34页
        2.4.1 最佳合成条件的探讨第26-32页
            2.4.1.1 反应温度的选择第27-28页
            2.4.1.2 反应时间的选择第28-30页
            2.4.1.3 摩尔比的选择第30页
            2.4.1.4 戊二醛用量的选择第30-32页
        2.4.2 DACTS红外光谱分析第32-33页
        2.4.3 DACTS热重分析第33-34页
    2.5 本章小结第34-36页
第3章 硫脲改性壳聚糖的微波制各第36-46页
    3.1 引言第36-37页
    3.2 实验部分第37-38页
        3.2.1 主要仪器装置第37页
        3.2.2 主要试剂材料第37-38页
    3.3 实验方法第38-39页
        3.3.1 交联改性壳聚糖(GCTS)的微波合成第38页
        3.3.2 氯乙酸改性壳聚糖(CCTS)的微波合成第38页
        3.3.3 硫脲改性壳聚糖(TCCTS)的微波合成第38页
        3.3.4 硫脲改性壳聚糖的结构分析与表征第38-39页
            3.3.4.1 元素分析(EA)第38页
            3.3.4.2 红外光谱分析(FTIR)第38-39页
            3.3.4.3 热重分析(TGA)第39页
    3.4 结果与讨论第39-44页
        3.4.1 最佳合成条件的探讨第39-42页
            3.4.1.1 反应温度的选择第40页
            3.4.1.2 摩尔比的选择第40-41页
            3.4.1.3 氯乙酸用量的选择第41-42页
        3.4.2 TCCTS红外光谱分析第42-43页
        3.4.3 TCCTS热重分析第43-44页
    3.5 本章小结第44-46页
第4章 吸附性能的研究第46-66页
    4.1 引言第46页
    4.2 实验部分第46-47页
        4.2.1 主要仪器装置第46-47页
        4.2.2 主要试剂材料第47页
    4.3 实验方法第47-51页
        4.3.1 改性壳聚糖的制备第47-48页
            4.3.1.1 2,6-二氨基吡啶改性壳聚糖(DACTS)的制备第47-48页
            4.3.1.2 硫脲改性壳聚糖(TCCTS)的制备第48页
        4.3.2 静态吸附实验第48-50页
            4.3.2.1 pH对吸附容量的影响第48-49页
            4.3.2.2 吸附动力学第49页
            4.3.2.3 等温吸附第49页
            4.3.2.4 吸附热力学第49页
            4.3.2.5 静态解吸及再生实验第49-50页
        4.3.3 动态吸附实验第50页
            4.3.3.1 动态吸附实验第50页
            4.3.3.2 动态解吸实验第50页
        4.3.4 Zeta电位分析第50页
        4.3.5 扫描电镜分析(SEM)第50-51页
    4.4 结果与讨论第51-64页
        4.4.1 静态吸附实验第51-58页
            4.4.1.1 苋菜红标准工作曲线第51页
            4.4.1.2 pH对吸附量的影响第51-52页
            4.4.1.3 吸附动力学第52-55页
            4.4.1.4 等温吸附第55-56页
            4.4.1.5 吸附热力学第56-57页
            4.4.1.6 静态解吸及再生实验第57-58页
        4.4.2 动态吸附实验第58-61页
            4.4.2.1 初始浓度对动态吸附的影响第58-59页
            4.4.2.2 流速对动态吸附的影响第59-61页
            4.4.2.3 动态解吸实验第61页
        4.4.3 Zeta电位分析第61-63页
            4.4.3.1 DACTS Zeta电位分析第61-62页
            4.4.3.2 TCCTS Zeta电位分析第62-63页
        4.4.4 扫描电镜表面形态分析第63-64页
    4.5 本章小结第64-66页
第5章 饮料中苋菜红的分析检测第66-74页
    5.1 引言第66页
    5.2 实验仪器与材料第66-67页
        5.2.1 实验仪器第66-67页
        5.2.2 实验材料与试剂第67页
    5.3 实验方法第67-68页
        5.3.1 样品预处理第67页
        5.3.2 预富集条件的确定第67-68页
        5.3.3 流速对回收率的影响第68页
        5.3.4 预富集-分光光度法第68页
    5.4 结果与讨论第68-72页
        5.4.1 预富集参数的确定第68-70页
            5.4.1.1 富集方式及pH第68页
            5.4.1.2 改性壳聚糖用量的确定第68页
            5.4.1.3 吸附流速的影响第68-69页
            5.4.1.4 解吸流速的影响第69-70页
            5.4.1.5 溶液体积和富集倍数的确定第70页
        5.4.2 饮料中苋菜红的测定第70-71页
            5.4.2.1 两种方法测定饮料中苋菜红的对比第70-71页
            5.4.2.2 精密度测定第71页
        5.4.3 加标回收实验第71-72页
    5.5 本章小结第72-74页
第6章 结论与展望第74-78页
    6.1 结论第74-76页
    6.2 展望第76-78页
参考文献第78-86页
致谢第86-87页

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