| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第8-17页 |
| 1.1 绿豆概述 | 第8-11页 |
| 1.1.1 绿豆成分 | 第9页 |
| 1.1.2 绿豆的营养功效 | 第9-10页 |
| 1.1.3 绿豆蛋白的提取方法 | 第10-11页 |
| 1.1.4 绿豆蛋白的氨基酸组成 | 第11页 |
| 1.2 生物活性肽概述 | 第11-14页 |
| 1.2.1 生物活性肽基本概念 | 第11-12页 |
| 1.2.2 生物活性肽分类 | 第12页 |
| 1.2.3 生物活性肽的获得途径 | 第12-13页 |
| 1.2.4 绿豆多肽研究进展 | 第13-14页 |
| 1.3 醒酒肽概述 | 第14-15页 |
| 1.3.1 酒精中毒的危害 | 第14页 |
| 1.3.2 醉酒机理 | 第14-15页 |
| 1.3.3 醒酒肽的研究 | 第15页 |
| 1.4 论文研究的目的和主要内容 | 第15-17页 |
| 1.4.1 本研究的目的和意义 | 第15-16页 |
| 1.4.2 本论文的主要研究内容 | 第16-17页 |
| 第二章 绿豆分离蛋白的制备工艺优化 | 第17-24页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第17页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第17页 |
| 2.1.2 试验仪器 | 第17页 |
| 2.2 试验方法 | 第17-19页 |
| 2.2.1 制备绿豆分离蛋白的工艺流程 | 第17-18页 |
| 2.2.2 蛋白得率的计算 | 第18页 |
| 2.2.3 绿豆分离蛋白提取条件的研究 | 第18页 |
| 2.2.4 绿豆分离蛋白提取条件优化 | 第18页 |
| 2.2.5 绿豆蛋白酸沉条件的确定 | 第18-19页 |
| 2.2.6 蛋白含量测定—双缩脲法 | 第19页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第19-23页 |
| 2.3.1 单因素实验结果分析 | 第19-22页 |
| 2.3.2 正交试验结果分析 | 第22页 |
| 2.3.3 酸沉时不同pH的沉淀作用 | 第22-23页 |
| 2.4 本章小结 | 第23-24页 |
| 第三章 复合酶解制备绿豆多肽 | 第24-31页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第24-25页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第24页 |
| 3.1.2 试验仪器 | 第24-25页 |
| 3.2 试验方法 | 第25-26页 |
| 3.2.1 水解度(Degree of hydrolysis，DH)的测定 | 第25页 |
| 3.2.2 绿豆分离蛋白的酶解操作 | 第25页 |
| 3.2.3 蛋白酶的选择 | 第25-26页 |
| 3.2.4 双酶水解试验 | 第26页 |
| 3.2.5 碱性蛋白酶水解绿豆蛋白的单因素试验 | 第26页 |
| 3.2.6 正交试验优化碱性蛋白酶酶解条件 | 第26页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第26-30页 |
| 3.3.1 蛋白酶的选择 | 第26-27页 |
| 3.3.2 碱性蛋白酶酶解绿豆蛋白的单因素试验 | 第27-29页 |
| 3.3.3 正交试验结果分析 | 第29-30页 |
| 3.4 本章小结 | 第30-31页 |
| 第四章 绿豆多肽的超滤分离及对ADH活性影响研究 | 第31-38页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第31-32页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第31页 |
| 4.1.2 试验仪器 | 第31-32页 |
| 4.2 试验方法 | 第32-35页 |
| 4.2.1 绿豆多肽的超滤膜分离 | 第32页 |
| 4.2.2 绿豆多肽在体外对ADH活性的影响 | 第32-33页 |
| 4.2.3 绿豆多肽对小鼠肝脏中ADH活性的影响研究 | 第33-35页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第35-37页 |
| 4.3.1 超滤膜分离绿豆多肽研究 | 第35页 |
| 4.3.2 绿豆多肽在体外对ADH活性的影响 | 第35页 |
| 4.3.3 饮用酒用量的确定 | 第35-36页 |
| 4.3.4 绿豆多肽对小鼠肝脏中ADH活性的影响 | 第36-37页 |
| 4.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第五章 总结讨论与展望 | 第38-41页 |
| 5.1 结论 | 第38页 |
| 5.2 讨论 | 第38-39页 |
| 5.3 未来展望 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-45页 |
| 作者简介 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46页 |