摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-9页 |
引言 | 第16-17页 |
1 绪论 | 第17-28页 |
1.1 胶原蛋白的研究现状 | 第17-21页 |
1.1.1 胶原蛋白的简介 | 第17页 |
1.1.2 胶原蛋白的结构 | 第17页 |
1.1.3 胶原蛋白的提取方法 | 第17-19页 |
1.1.4 胶原蛋白的交联 | 第19-20页 |
1.1.5 胶原蛋白的应用 | 第20-21页 |
1.2 羟基磷灰石吸附应用的研究进展 | 第21-22页 |
1.2.1 羟基磷灰石简介 | 第21页 |
1.2.2 羟基磷灰石的吸附研究 | 第21-22页 |
1.3 类胡萝卜素的研究现状 | 第22-24页 |
1.3.1 类胡萝卜素的概述 | 第23页 |
1.3.2 类胡萝卜素的结构 | 第23页 |
1.3.3 类胡萝卜素的理化性质 | 第23页 |
1.3.4 类胡萝卜素的生理功能 | 第23-24页 |
1.4 体外抗氧化活性方法研究进展 | 第24-26页 |
1.4.1 DPPH法 | 第24页 |
1.4.2 ABTS法 | 第24页 |
1.4.3 铁氰化钾还原法 | 第24-26页 |
1.5 本论文研究的技术路线 | 第26页 |
1.6 本论文研究的内容及目的意义 | 第26-28页 |
1.6.1 本论文研究的主要内容 | 第26页 |
1.6.2 本论文研究的目的意义 | 第26-27页 |
1.6.3 创新点 | 第27-28页 |
2 材料与方法 | 第28-40页 |
2.1 材料与试剂 | 第28页 |
2.2 仪器与设备 | 第28页 |
2.3 罗非鱼皮原料特征及胶原蛋白的提取 | 第28-31页 |
2.3.1 基本营养成分的测定 | 第28页 |
2.3.2 鱼皮胶原蛋白含量的测定 | 第28-29页 |
2.3.3 胶原蛋白的提取 | 第29-30页 |
2.3.4 胶原蛋白的氨基酸组成测定 | 第30页 |
2.3.5 紫外光谱分析 | 第30页 |
2.3.6 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺电泳(SDS-PAGE)分析 | 第30-31页 |
2.4 罗非鱼皮色素的提取分离及其抗氧化作用 | 第31-33页 |
2.4.1 罗非鱼表皮色素的收集方法 | 第31页 |
2.4.2 罗非鱼皮色素的提取 | 第31-32页 |
2.4.3 DPPH自由基清除能力的测定 | 第32页 |
2.4.4 X-5大孔树脂吸附鱼皮色素 | 第32-33页 |
2.5 不同交联剂交联胶原支架的制备及性能表征 | 第33-34页 |
2.5.1 交联条件的确定 | 第33页 |
2.5.2 性能检测 | 第33-34页 |
2.6 吸附EGCG鱼鳞材料的制备及性能测定 | 第34-36页 |
2.6.1 鱼鳞预处理 | 第34页 |
2.6.2 吸附EGCG材料制备条件的确定 | 第34-35页 |
2.6.3 EGCG含量的测定 | 第35页 |
2.6.4 EGCG标准曲线的绘制 | 第35页 |
2.6.5 蛋白质的测定 | 第35页 |
2.6.6 灰分的测定 | 第35页 |
2.6.7 静态吸附实验 | 第35-36页 |
2.7 鱼尾中类胡萝卜素的提取、鉴定、抗氧化性及稳定性的测定 | 第36-39页 |
2.7.1 鱼尾中类胡萝卜素的提取 | 第36-37页 |
2.7.2 鱼尾色素的鉴定 | 第37页 |
2.7.3 鱼尾色素的抗氧化性 | 第37-38页 |
2.7.4 鱼尾色素的稳定性 | 第38-39页 |
2.8 罗非鱼尾胶原蛋白的提取与鉴定 | 第39-40页 |
2.8.1 原料成分的测定 | 第39页 |
2.8.2 鱼尾预处理 | 第39页 |
2.8.3 鱼尾中脂溶性色素去除条件优化 | 第39页 |
2.8.4 鱼尾胶原蛋白的提取及纯化 | 第39页 |
2.8.5 胶原蛋白纯度的测定 | 第39-40页 |
2.8.6 紫外光谱分析 | 第40页 |
2.8.7 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺电泳(SDS-PAGE)分析 | 第40页 |
3 结果与讨论 | 第40-84页 |
3.1 罗非鱼皮原料特征及胶原蛋白的提取结果 | 第40-42页 |
3.1.1 罗非鱼皮基本成分 | 第40页 |
3.1.2 罗非鱼皮胶原蛋白含量 | 第40页 |
3.1.3 酸法和酸促酶法提取胶原蛋白的提取率 | 第40页 |
3.1.4 胶原蛋白的氨基酸组成 | 第40-41页 |
3.1.5 鱼皮胶原蛋白的紫外扫描光谱 | 第41-42页 |
3.1.6 鱼皮胶原蛋白SDS-PAGE结果 | 第42页 |
3.2 罗非鱼皮色素的提取分离及其抗氧化作用结果 | 第42-46页 |
3.2.1 鱼皮色素的提取 | 第42-43页 |
3.2.2 不同浓度鱼皮色素对DPPH自由基清除率的影响 | 第43页 |
3.2.3 静态吸附条件对吸附效果的影响 | 第43-44页 |
3.2.4 静态洗脱条件对解吸效果的影响 | 第44-46页 |
3.2.5 动态洗脱条件对解吸效果的影响 | 第46页 |
3.2.6 经树脂分离后的色素对DPPH自由基的清除作用 | 第46页 |
3.3 不同交联剂交联胶原支架的制备及性能表征结果 | 第46-57页 |
3.3.1 EDC交联条件的确定 | 第46-48页 |
3.3.2 EGCG交联胶原蛋白条件的确定 | 第48-49页 |
3.3.3 EDC/EGCG交联条件的确定 | 第49-51页 |
3.3.4 EDC用量对胶原支架理化性质的影响 | 第51-54页 |
3.3.5 EGCG用量对胶原支架理化性质的影响 | 第54-56页 |
3.3.6 不同交联剂交联的胶原基质理化性质比较 | 第56-57页 |
3.4 吸附EGCG鱼鳞材料的制备及性能测定结果 | 第57-66页 |
3.4.1 EGCG标准曲线 | 第57-58页 |
3.4.2 吸附材料制备条件的确定 | 第58-62页 |
3.4.3 鱼鳞吸附EGCG机理 | 第62-63页 |
3.4.4 吸附条件的优化 | 第63-64页 |
3.4.5 解吸条件的优化 | 第64-66页 |
3.5 鱼尾色素中类胡萝卜素的提取、鉴定、抗氧化性及稳定性测定结果 | 第66-76页 |
3.5.1 鱼尾中类胡萝卜素提取工艺研究 | 第66-70页 |
3.5.2 鱼尾色素中类萝卜素的鉴定 | 第70-71页 |
3.5.3 抗氧化活性的测定 | 第71-73页 |
3.5.4 鱼尾色素中类胡萝卜素稳定性的研究 | 第73-76页 |
3.6 鱼尾胶原蛋白的提取与鉴定结果 | 第76-84页 |
3.6.1 罗非鱼尾基本成分测定 | 第76-77页 |
3.6.2 鱼尾中脂溶性色素去除条件实验 | 第77-78页 |
3.6.3 鱼尾胶原蛋白提取条件的单因素试验 | 第78-81页 |
3.6.4 鱼尾胶原蛋白提取工艺条件的确定 | 第81-82页 |
3.6.5 胶原蛋白的纯度测定 | 第82页 |
3.6.6 胶原蛋白的紫外光谱分析 | 第82页 |
3.6.7 胶原蛋白SDS-PAGE结果 | 第82-84页 |
4 结论与展望 | 第84-87页 |
4.1 结论 | 第84-86页 |
4.1.1 罗非鱼皮原料特征及胶原蛋白的提取 | 第84页 |
4.1.2 罗非鱼皮色素的提取分离及其抗氧化作用 | 第84页 |
4.1.3 不同交联剂交联胶原支架的制备及性能表征 | 第84-85页 |
4.1.4 吸附儿茶素表没食子儿茶素没食子酸酯(EGCG)鱼鳞材料的制备及性能 | 第85页 |
4.1.5 鱼尾色素中类胡萝卜素的提取、鉴定、抗氧化性及稳定性的测定 | 第85-86页 |
4.1.6 鱼尾胶原蛋白的提取与鉴定 | 第86页 |
4.2 问题与展望 | 第86-87页 |
参考文献 | 第87-92页 |
硕士期间发表的论文 | 第92-93页 |
致谢 | 第93页 |