| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 1 前言 | 第12-23页 |
| 1.1 多糖的研究进展 | 第12-17页 |
| 1.1.1 多糖提取方法研究 | 第12页 |
| 1.1.2 多糖分离纯化研究 | 第12-14页 |
| 1.1.3 多糖纯度鉴定 | 第14-15页 |
| 1.1.4 多糖分子量测定 | 第15页 |
| 1.1.5 多糖结构研究 | 第15-17页 |
| 1.2 螺旋藻多糖研究现状 | 第17-21页 |
| 1.2.1 螺旋藻多糖概况及利用现状 | 第17-18页 |
| 1.2.2 螺旋藻多糖提取纯化及结构研究 | 第18-19页 |
| 1.2.3 螺旋藻多糖活性研究进展 | 第19-21页 |
| 1.3 Caco-2 细胞模拟肠道屏障模型 | 第21-22页 |
| 1.4 谷氨酰胺对肠道粘膜的影响 | 第22页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第22-23页 |
| 1.6 研究内容 | 第23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-38页 |
| 2.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.2 试验试剂 | 第23-24页 |
| 2.3 主要仪器与设备 | 第24-25页 |
| 2.4 技术路线 | 第25-26页 |
| 2.5 试验方法 | 第26-38页 |
| 2.5.1 主要成分测定 | 第26-28页 |
| 2.5.2 螺旋藻多糖提取工艺研究 | 第28-29页 |
| 2.5.3 螺旋藻多糖去蛋白的工艺研究 | 第29-30页 |
| 2.5.4 螺旋藻多糖分离纯化研究 | 第30-31页 |
| 2.5.5 抗肿瘤细胞活性研究 | 第31-33页 |
| 2.5.6 预防Caco-2 细胞模拟的小肠道氧化损伤活性研究 | 第33-35页 |
| 2.5.7 PSP31 理化性质和结构分析 | 第35-38页 |
| 2.5.8 试验数据处理 | 第38页 |
| 3 结果与分析 | 第38-69页 |
| 3.1 提取工艺试验结果 | 第38-42页 |
| 3.1.1 单因素试验结果 | 第38-41页 |
| 3.1.2 提取工艺正交试验结果 | 第41-42页 |
| 3.2 去蛋白试验工艺结果 | 第42-46页 |
| 3.2.1 考马斯亮蓝法标准曲线 | 第42-43页 |
| 3.2.2 单因素试验结果 | 第43-45页 |
| 3.2.3 去蛋白正交试验结果 | 第45-46页 |
| 3.3 PSP分离纯化结果 | 第46-49页 |
| 3.3.1 超滤离心截留技术分离纯化 | 第46-48页 |
| 3.3.2 凝胶柱层析结果 | 第48-49页 |
| 3.4 PSP抗肿瘤活性研究 | 第49-53页 |
| 3.4.1 细胞培养与传代过程 | 第49-50页 |
| 3.4.2 Caco-2 细胞生长曲线测定 | 第50-51页 |
| 3.4.3 PSP抑制Caco-2 细胞增殖活性 | 第51-53页 |
| 3.5 PSP预防肠道屏障氧化损伤的活性研究 | 第53-58页 |
| 3.6 PSP31 的理化性质和结构分析 | 第58-69页 |
| 3.6.1 全波长扫描 | 第58-59页 |
| 3.6.2 高碘酸氧化法分析 | 第59-60页 |
| 3.6.3 PSP31 分子量测定 | 第60-61页 |
| 3.6.4 PSP31 红外光谱分析 | 第61-62页 |
| 3.6.5 PSP31 NMR分析 | 第62-63页 |
| 3.6.6 PSP31 单糖组成分析 | 第63-66页 |
| 3.6.7 PSP31 原子力显微镜分析 | 第66-69页 |
| 4 结论与讨论 | 第69-72页 |
| 4.1 结论 | 第69-70页 |
| 4.2 本文创新之处 | 第70页 |
| 4.3 PSP31 的进一步研究发展方向 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 附录 研究生期间发表的论文情况 | 第79页 |