摘要 | 第1-11页 |
Abstract | 第11-14页 |
缩略语表 | 第14-15页 |
第一章 绪论 | 第15-21页 |
1 多糖的研究概况 | 第15-16页 |
·多糖的提取 | 第15页 |
·多糖的分离 | 第15-16页 |
·多糖的纯化 | 第16页 |
·多糖的组成与结构 | 第16页 |
·多糖的生物活性 | 第16页 |
2 荔枝多糖的研究进展 | 第16-19页 |
·荔枝多糖的提取 | 第17页 |
·荔枝多糖的纯化 | 第17页 |
·荔枝多糖的结构分析 | 第17-18页 |
·荔枝多糖的生物活性 | 第18-19页 |
·抗氧化活性 | 第18页 |
·免疫调节活性 | 第18-19页 |
3 本研究的目的意义和主要内容 | 第19-21页 |
·本研究的目的和意义 | 第19页 |
·本课题研究的主要内容 | 第19-20页 |
·技术路线 | 第20-21页 |
第二章 荔枝多糖超声微波酶解协同提取工艺优化 | 第21-32页 |
1 材料与仪器 | 第21页 |
·材料与试剂 | 第21页 |
·原料 | 第21页 |
·试剂 | 第21页 |
·主要仪器 | 第21页 |
2 方法 | 第21-23页 |
·荔枝干制备 | 第21-22页 |
·荔枝果肉粉制备 | 第22页 |
·荔枝多糖的提取 | 第22页 |
·工艺酶种的筛选 | 第22页 |
·单因素试验 | 第22页 |
·多因素试验 | 第22-23页 |
·不同提取方法对荔枝多糖提取得率的影响 | 第23页 |
·多糖含量的测定与计算 | 第23页 |
·数据处理 | 第23页 |
3 结果与讨论 | 第23-31页 |
·不同酶种对荔枝多糖得率的影响 | 第23-24页 |
·单因素试验结果 | 第24-26页 |
·纤维素酶的添加量 | 第24页 |
·料液比 | 第24-25页 |
·酶解温度 | 第25页 |
·酶解pH | 第25页 |
·酶解时间 | 第25-26页 |
·多因素条件优化 | 第26-31页 |
·回归模型的检验 | 第26-29页 |
·双因素交互作用分析 | 第29-30页 |
·最佳优化条件 | 第30-31页 |
·不同提取方法对荔枝多糖提取得率的影响 | 第31页 |
4 讨论与结论 | 第31-32页 |
第三章 超声微波酶解协同法和热水法提取的荔枝多糖的活性比较及结构初析 | 第32-48页 |
·材料与试剂 | 第32页 |
·主要仪器 | 第32-33页 |
2 方法 | 第33-35页 |
·样品制备 | 第33页 |
·体外抗氧化活性的评价试验 | 第33-34页 |
·样品溶液的配制 | 第33页 |
·铁离子还原测定法(FRAP) | 第33页 |
·DPPH自由基清除能力的测定 | 第33-34页 |
·ABTS自由基清除能力的测定 | 第34页 |
·体外免疫活性的评价试验 | 第34页 |
·样品溶液的配制 | 第34页 |
·脾淋巴细胞悬液的制备 | 第34页 |
·脾淋巴细胞的增殖试验 | 第34页 |
·NK细胞活性的测定 | 第34页 |
·理化性质 | 第34页 |
·多糖含量的测定 | 第34页 |
·糖醛酸含量的测定 | 第34页 |
·蛋白质含量的测定 | 第34页 |
·结构分析 | 第34-35页 |
·紫外光谱检测 | 第34-35页 |
·红外光谱鉴定 | 第35页 |
·分子量测定 | 第35页 |
·GC-MS分析 | 第35页 |
·统计学分析 | 第35页 |
3 结果与分析 | 第35-47页 |
·LCP体外抗氧化活性的比较 | 第35-37页 |
·对Fe~(3+)还原能力的比较 | 第35页 |
·对DPPH自由基清除能力的比较 | 第35-36页 |
·对ABTS自由基清除能力的比较 | 第36-37页 |
·体外免疫活性的比较 | 第37-40页 |
·直接促进脾淋巴细胞增殖的比较 | 第37-38页 |
·协同刀豆蛋白ConA促进脾淋巴细胞增殖的比较 | 第38-39页 |
·协同脂多糖LPS促进脾淋巴细胞增殖的比较 | 第39-40页 |
·提高NK细胞活性的比较 | 第40页 |
·理化性质 | 第40-41页 |
·结构分析 | 第41-47页 |
·紫外分析 | 第41页 |
·红外可见光谱分析 | 第41-44页 |
·分子量测定 | 第44-45页 |
·GC-MS分析 | 第45-47页 |
4 讨论与结论 | 第47-48页 |
第四章 荔枝多糖的分级条件优化 | 第48-58页 |
1 材料与仪器 | 第48页 |
·材料与试剂 | 第48页 |
·仪器 | 第48页 |
2 方法 | 第48-50页 |
·样品溶液的配制 | 第48页 |
·纯化工艺 | 第48页 |
·DEAE-52纤维柱层析纯化 | 第48-49页 |
·DEAE-52的预处理 | 第48-49页 |
·纤维素层析柱的制备 | 第49页 |
·上样 | 第49页 |
·洗脱及收集 | 第49页 |
·离子交换纤维素的再生与保存 | 第49页 |
·洗脱条件的筛选 | 第49-50页 |
·洗脱溶剂的确定 | 第49页 |
·不同浓度多糖的最大上样体积 | 第49页 |
·最佳上样浓度的确定 | 第49页 |
·最佳上样体积的确定 | 第49页 |
·最佳洗脱流速的确定 | 第49页 |
·径长比的确定 | 第49-50页 |
·使用次数的确定 | 第50页 |
·纯化结果 | 第50页 |
·多糖含量测定 | 第50页 |
·洗脱率的计算 | 第50页 |
·数据统计分析 | 第50页 |
3 结果与分析 | 第50-56页 |
·洗脱溶剂的确定 | 第50-51页 |
·不同浓度多糖的最大上样体积 | 第51-52页 |
·上样浓度 | 第52页 |
·上样体积 | 第52-53页 |
·洗脱流速 | 第53页 |
·径长比 | 第53-54页 |
·重复利用性 | 第54页 |
·DEAE-52纤维素柱纯化结果 | 第54-56页 |
·0.1mol/L NaCl洗脱曲线 | 第54-55页 |
·0.2mol/L NaCl洗脱曲线 | 第55页 |
·0.3mol/L NaCl洗脱曲线 | 第55-56页 |
·0.3mol/L NaOH洗脱曲线 | 第56页 |
4 讨论与结论 | 第56-58页 |
第五章 荔枝多糖的活性成分分析 | 第58-71页 |
1 材料与仪器 | 第58页 |
·材料与试剂 | 第58页 |
·主要仪器 | 第58页 |
2 方法 | 第58-60页 |
·LCP1和LCP5 Fe~(3+)还原测定法(FRAP) | 第58-59页 |
·LCP1和LCP5体外免疫活性评价实验 | 第59页 |
·理化性质 | 第59页 |
·多糖含量的测定 | 第59页 |
·糖醛酸的测定 | 第59页 |
·蛋白质的测定 | 第59页 |
·结构分析 | 第59页 |
·紫外光谱分析 | 第59页 |
·红外光谱鉴定 | 第59页 |
·分子量测定 | 第59页 |
·GC-MS分析 | 第59页 |
·数据统计 | 第59-60页 |
3 结果与分析 | 第60-69页 |
·LCP1和LLCP5对Fe~(3+)还原能力的比较 | 第60页 |
·LCP1和LCP5组分体外免疫活性的比较 | 第60-64页 |
·促脾淋巴细胞增殖的比较 | 第60-63页 |
·NK细胞活性的比较 | 第63-64页 |
·理化性质 | 第64页 |
·结构分析 | 第64-69页 |
·紫外分析 | 第64-65页 |
·红外可见光谱分析 | 第65-67页 |
·分子量测定 | 第67页 |
·GC-MS分析 | 第67-69页 |
4 讨论与结论 | 第69-71页 |
结论与展望 | 第71-73页 |
结论 | 第71页 |
创新点 | 第71-72页 |
前景与展望 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-81页 |
致谢 | 第81-82页 |
附录 | 第82页 |