| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第13-23页 |
| 1.1 体外消化模型概述 | 第13-14页 |
| 1.2 常用体外消化模型 | 第14-16页 |
| 1.2.1 PBET法 | 第14页 |
| 1.2.2 IVG法 | 第14-15页 |
| 1.2.3 DIN法 | 第15页 |
| 1.2.4 SHIME法 | 第15页 |
| 1.2.5 RIVM法 | 第15页 |
| 1.2.6 其他新方法 | 第15-16页 |
| 1.3 Caco-2/HT-29细胞共培养肠吸收单层模型 | 第16-18页 |
| 1.3.1 Caco-2肠细胞模型 | 第16页 |
| 1.3.2 Caco-2肠细胞模型局限与改进 | 第16-17页 |
| 1.3.3 Caco-2/HT-29共培养肠细胞模型应用研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 大米中镉污染 | 第18-20页 |
| 1.4.1 国内外大米镉限量标准 | 第18页 |
| 1.4.2 稻米中镉的存在形态 | 第18-19页 |
| 1.4.3 镉的吸收及代谢途径 | 第19页 |
| 1.4.4 膳食中镉的生物可给性和生物有效性 | 第19-20页 |
| 1.5 大米中污染物镉的去除与控制技术 | 第20-21页 |
| 1.5.1 种植与加工过程中控制 | 第20页 |
| 1.5.2 利用多酚类物质控制 | 第20-21页 |
| 1.6 本文的研究内容和意义 | 第21-23页 |
| 1.6.1 研究意义 | 第21页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第21-23页 |
| 2 Caco-2/HT-29细胞共培养的肠吸收模型建立 | 第23-42页 |
| 2.1 前言 | 第23页 |
| 2.2 材料与试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第23-24页 |
| 2.3 实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.4 实验方法 | 第25-29页 |
| 2.4.1 主要试剂的配制 | 第25页 |
| 2.4.2 细胞培养 | 第25-26页 |
| 2.4.3 细胞肠吸收模型的建立 | 第26-27页 |
| 2.4.4 跨膜电阻值测定 | 第27页 |
| 2.4.5 碱性磷酸酶活性测定 | 第27-28页 |
| 2.4.6 表观通透系数的测定 | 第28页 |
| 2.4.7 细胞存活率的MTT法测定 | 第28页 |
| 2.4.8 细胞单层模型的形态学观察 | 第28-29页 |
| 2.5 结果与分析 | 第29-40页 |
| 2.5.1 不同比例Caco-2/HT-29细胞模型的电阻值测定结果与分析 | 第29-31页 |
| 2.5.2 不同比例Caco-2/HT-29细胞模型的AKP活性测定结果与分析 | 第31页 |
| 2.5.3 不同比例Caco-2/HT-29细胞模型的通透性测定结果与分析 | 第31-32页 |
| 2.5.4 不同比例Caco-2/HT-29细胞模型的形态学观察结果与分析 | 第32-34页 |
| 2.5.5 MTT法筛选快速培养促分化剂的结果与分析 | 第34-35页 |
| 2.5.6 快速培养Caco-2/HT-29 (70:30)细胞模型的电阻值测定结果与分析 | 第35-36页 |
| 2.5.7 快速培养Caco-2/HT-29 (70:30)细胞模型的AKP活性测定结果与分析 | 第36-37页 |
| 2.5.8 快速培养Caco-2/HT-29 (70:30)细胞模型的通透性测定结果与分析 | 第37-38页 |
| 2.5.9 快速培养Caco-2/HT-29 (70:30)细胞模型的形态学观察结果与分析 | 第38-40页 |
| 2.6 本章小结 | 第40-42页 |
| 3 大米中污染物镉的体外消化研究 | 第42-55页 |
| 3.1 前言 | 第42页 |
| 3.2 材料与试剂 | 第42-44页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第42-43页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第43-44页 |
| 3.3 实验仪器 | 第44页 |
| 3.4 实验方法 | 第44-47页 |
| 3.4.1 器具清洗 | 第44页 |
| 3.4.2 大米样品的制备 | 第44页 |
| 3.4.3 米饭样品的制备 | 第44-45页 |
| 3.4.4 体外胃肠消化模拟 | 第45-46页 |
| 3.4.5 样品中镉及其他主要元素的ICP-MS法测定 | 第46-47页 |
| 3.4.6 大米样品中镉的体外消化生物可给性计算 | 第47页 |
| 3.4.7 数据处理与分析 | 第47页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第47-53页 |
| 3.5.1 三种大米中镉及其他金属元素含量测定结果与分析 | 第47-48页 |
| 3.5.2 三种大米蒸煮前后镉及钙、铁、铜、锌含量变化结果与分析 | 第48-49页 |
| 3.5.3 相同进食量的三种米饭中镉体外消化生物可给性研究结果与分析 | 第49-51页 |
| 3.5.4 不同进食量的同种米饭中镉体外消化生物可给性研究结果与分析 | 第51-52页 |
| 3.5.5 镉超标米饭中镉生物可给性与钙、铁、铜、锌含量变化结果与分析 | 第52-53页 |
| 3.6 本章小结 | 第53-55页 |
| 4 大米中污染物镉的体外肠吸收研究与初步风险评估 | 第55-65页 |
| 4.1 前言 | 第55-56页 |
| 4.2 材料与试剂 | 第56页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第56页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第56页 |
| 4.3 实验仪器 | 第56页 |
| 4.4 实验方法 | 第56-58页 |
| 4.4.1 Caco-2/HT-29(70:30)细胞快速共培养的肠吸收模型建立 | 第56页 |
| 4.4.2 镉超标米饭的体外消化实验 | 第56-57页 |
| 4.4.3 镉超标米饭的体外肠吸收实验 | 第57页 |
| 4.4.4 EGCG对米饭消化液中镉吸收的影响研究 | 第57页 |
| 4.4.5 样品中元素含量的ICP-MS测定 | 第57页 |
| 4.4.6 元素吸收过程中的转运吸收率计算 | 第57页 |
| 4.4.7 样品中镉的体外吸收生物有效性计算 | 第57-58页 |
| 4.4.8 大米中污染物镉的每日暴露量计算 | 第58页 |
| 4.4.9 大米中污染物镉的每日最大吸收量计算 | 第58页 |
| 4.4.10 数据处理与分析 | 第58页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第58-63页 |
| 4.5.1 镉超标大米、米饭及其消化液中元素含量测定结果与分析 | 第58-59页 |
| 4.5.2 EGCG对镉超标大米米饭消化液中镉转运吸收率影响结果与分析 | 第59-60页 |
| 4.5.3 EGCG对镉超标米饭消化液中镉生物有效性影响结果与分析 | 第60-61页 |
| 4.5.4 大米中污染物镉的每日暴露量评估结果与分析 | 第61-62页 |
| 4.5.5 大米中污染物镉的每日最大吸收量评估结果与分析 | 第62-63页 |
| 4.6 本章小结 | 第63-65页 |
| 5 总结与展望 | 第65-69页 |
| 5.1 总结 | 第65-66页 |
| 5.2 创新点 | 第66页 |
| 5.3 展望 | 第66-69页 |
| 参考文献 | 第69-81页 |
| 附录 (攻读学位期间的主要学术成果) | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
