| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-20页 |
| 1.1 重金属检测意义及方法 | 第9-10页 |
| 1.1.1 原子吸收光谱法 | 第10页 |
| 1.1.2 电感耦合等离子体质谱法(ICP-MS) | 第10页 |
| 1.1.3 紫外可见分光光度法 | 第10页 |
| 1.1.4 电化学分析检测法 | 第10页 |
| 1.1.5 荧光光谱法 | 第10页 |
| 1.2 氨基酸检测意义及方法 | 第10-11页 |
| 1.2.1 紫外-可见分光光度法 | 第11页 |
| 1.2.2 液相色谱法法 | 第11页 |
| 1.2.3 荧光分析法 | 第11页 |
| 1.3 荧光银纳米簇 | 第11-15页 |
| 1.3.1 辐射还原法合成银纳米簇 | 第12页 |
| 1.3.2 光化学还原法合成银纳米簇 | 第12-13页 |
| 1.3.3 超声化学法合成银纳米簇 | 第13-14页 |
| 1.3.4 微波辅助法合成银纳米簇 | 第14页 |
| 1.3.5 化学还原法合成银纳米簇 | 第14页 |
| 1.3.6 DNA为模板合成银纳米簇 | 第14-15页 |
| 1.4 DNA/AgNCs作为荧光探针构建离子、分子检测生物传感器 | 第15-18页 |
| 1.5 DNA/AgNCs作为荧光探针在生物成像的应用 | 第18-19页 |
| 1.6 开展本研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 试剂与仪器 | 第20-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.2.1 荧光探针银纳米簇的制备 | 第22页 |
| 2.2.2 DNA序列的设计和优化 | 第22页 |
| 2.2.3 铜离子检测反应条件pH的优化 | 第22页 |
| 2.2.4 铜离子检测 | 第22页 |
| 2.2.5 该方法对其他金属离子的响应 | 第22-23页 |
| 2.2.6 实际水样中铜离子的检测 | 第23页 |
| 2.2.7 铜离子条件优化 | 第23页 |
| 2.2.8 半胱氨酸检测 | 第23页 |
| 2.2.9 组氨酸检测 | 第23页 |
| 2.2.10 特异性检测 | 第23页 |
| 2.2.11 半胱氨酸的分别检测 | 第23页 |
| 2.2.12 组氨酸的分别检测 | 第23-24页 |
| 3 结果与讨论 | 第24-41页 |
| 3.1 DNA序列的设计 | 第24-26页 |
| 3.2 比率型荧光检测铜离子的设计 | 第26页 |
| 3.3 荧光银纳米簇合成表征 | 第26-27页 |
| 3.4 比率型检测检测铜离子原理研究 | 第27-28页 |
| 3.5 铜离子检测条件的考察 | 第28-29页 |
| 3.6 铜离子检测 | 第29-30页 |
| 3.7 稳定性考察 | 第30-31页 |
| 3.8 特异性检测 | 第31-32页 |
| 3.9 水样品中铜离子的检测 | 第32页 |
| 3.10 Cys与His检测的原理设计 | 第32-33页 |
| 3.11 Cys与His检测原理验证 | 第33-34页 |
| 3.12 Cys与His检测条件优化 | 第34页 |
| 3.13 Cys检测 | 第34-35页 |
| 3.14 His检测 | 第35-36页 |
| 3.15 特异性检测 | 第36-37页 |
| 3.16 His和Cys分别检测 | 第37-41页 |
| 4 结论 | 第41-43页 |
| 4.1 全文结论 | 第41页 |
| 4.2 论文的创新点 | 第41页 |
| 4.3 论文的不足之处 | 第41-43页 |
| 5 参考文献 | 第43-51页 |
| 6 展望 | 第51-52页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文及专利申请情况 | 第52-54页 |
| 8 致谢 | 第54页 |
