| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 1 前言 | 第8-21页 |
| 1.1 Kefir粒概述 | 第8-9页 |
| 1.1.1 Kefir粒结构与组成 | 第8页 |
| 1.1.2 Kefir粒菌相组成与分布 | 第8-9页 |
| 1.1.3 Kefir粒菌相关系 | 第9页 |
| 1.2 Kefir概述 | 第9-11页 |
| 1.2.1 Kefir的保健功能 | 第9-10页 |
| 1.2.2 Kefir规模生产遇到的问题 | 第10页 |
| 1.2.3 Kefir开发前景 | 第10-11页 |
| 1.3 乳酸菌的胆固醇降解功能 | 第11-13页 |
| 1.3.1 胆固醇与人体的关系 | 第11页 |
| 1.3.2 乳酸菌降解胆固醇的研究 | 第11-12页 |
| 1.3.3 乳酸菌降胆固醇作用机理 | 第12-13页 |
| 1.4 发酵剂概述 | 第13-14页 |
| 1.4.1 酸奶发酵剂 | 第13-14页 |
| 1.4.2 真空冷冻干燥法应用于发酵剂的制备 | 第14页 |
| 1.4.3 喷雾干燥法应用于发酵剂的制备 | 第14页 |
| 1.5 变性梯度凝胶电泳(DGGE)技术 | 第14-20页 |
| 1.5.1 PCR-DGGE技术基本原理 | 第15-16页 |
| 1.5.2 PCR-DGGE技术流程 | 第16-17页 |
| 1.5.3 PCR-DGGE技术的应用 | 第17-19页 |
| 1.5.4 PCR-DGGE的缺点和克服办法 | 第19-20页 |
| 1.6 本课题研究的主要目的和意义 | 第20-21页 |
| 1.6.1 研究的目的 | 第20页 |
| 1.6.2 研究的意义 | 第20页 |
| 1.6.3 论文主要研究内容 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-24页 |
| 2.1.1 主要原料 | 第21页 |
| 2.1.2 主要药品与试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要仪器及设备 | 第22页 |
| 2.1.4 培养基及溶液 | 第22-23页 |
| 2.1.5 溶液的配置 | 第23页 |
| 2.1.6 DGGE变性梯度胶的配置方法 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-33页 |
| 2.2.1 利用PCR-DGGE技术分析Kefir粒微生物菌相 | 第24-28页 |
| 2.2.2 利用PCR-DGGE对Kefir发酵乳的微生物菌相进行动态监测 | 第28页 |
| 2.2.3 植物乳杆菌MA2与Kefir粒的DGGE | 第28页 |
| 2.2.4 MA2体外降胆固醇实验 | 第28-30页 |
| 2.2.5 MA2发酵剂制备 | 第30-33页 |
| 3 结果与讨论 | 第33-49页 |
| 3.1 DGGE分析Kefir粒菌相 | 第33-35页 |
| 3.1.1 Kefir粒培养 | 第33页 |
| 3.1.2 Kefir粒总DNA提取 | 第33-34页 |
| 3.1.3 Kefir粒总DNA PCR扩增核糖体DNA可变区 | 第34页 |
| 3.1.4 Kefir粒DGGE垂直电泳 | 第34-35页 |
| 3.2 DGGE法分析Kefir发酵乳微生物菌相动态变化 | 第35-39页 |
| 3.2.1 Kefir发酵乳中DNA组提取 | 第35-36页 |
| 3.2.2 Kefir发酵乳PCR扩增 | 第36-39页 |
| 3.3 植物乳杆菌MA2的DGGE条带 | 第39-40页 |
| 3.4 MA2体外降胆固醇实验 | 第40-42页 |
| 3.4.1 胆固醇标准曲线 | 第40-41页 |
| 3.4.2 胆固醇浓度对MA2胆固醇移除率的影响 | 第41页 |
| 3.4.3 MA2不同培养时间对胆固醇移除率的影响 | 第41-42页 |
| 3.5 MA2发酵剂制备 | 第42-49页 |
| 3.5.1 喷雾干燥条件对发酵剂的影响 | 第42-44页 |
| 3.5.2 喷雾干燥条件的响应面分析 | 第44-47页 |
| 3.5.3 干粉发酵剂品质评定 | 第47-49页 |
| 4 结论 | 第49-50页 |
| 5 展望 | 第50-51页 |
| 6 参考文献 | 第51-58页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第58-59页 |
| 8 致谢 | 第59页 |
