摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩写词表 | 第12-14页 |
第1章 绪论 | 第14-28页 |
1.1 霉菌毒素对畜禽的危害研究进展 | 第14-17页 |
1.1.1 霉菌毒素对生长能力的影响 | 第14页 |
1.1.2 霉菌毒素对繁殖能力的影响 | 第14-15页 |
1.1.3 霉菌毒素对免疫功能的影响 | 第15-16页 |
1.1.4 霉菌毒素对动物肠道、内脏的危害 | 第16-17页 |
1.2 霉菌毒素对细胞DNA损伤研究进展 | 第17-22页 |
1.2.1 霉菌毒素对肠细胞DNA损伤的影响 | 第18-19页 |
1.2.2 霉菌毒素对肝细胞DNA损伤的影响 | 第19-20页 |
1.2.3 霉菌毒素对肾细胞DNA损伤的影响 | 第20-21页 |
1.2.4 霉菌毒素对神经细胞DNA损伤的影响 | 第21-22页 |
1.3 霉菌毒素的毒性降解研究进展 | 第22-24页 |
1.3.1 物理降解 | 第22-23页 |
1.3.2 化学降解 | 第23页 |
1.3.3 生物降解 | 第23-24页 |
1.4 LF对细胞的保护作用 | 第24-28页 |
1.4.1 LF的结构 | 第24-25页 |
1.4.2 LF的生理功能 | 第25-28页 |
第2章 AFM1与OTA联合作用诱导分化Caco-2 细胞凋亡作用机制 | 第28-40页 |
2.1 材料与方法 | 第29-30页 |
2.1.1 实验材料 | 第29页 |
2.1.2 实验仪器 | 第29-30页 |
2.2 实验方法 | 第30-32页 |
2.2.1 细胞培养 | 第30页 |
2.2.2 细胞增殖抑制试验 | 第30页 |
2.2.3 细胞凋亡率测定 | 第30-31页 |
2.2.4 细胞活性氧释放量检测 | 第31页 |
2.2.5 线粒体膜电位(mitochondrial membrane potential, MMP)检测 | 第31页 |
2.2.6 线粒体相关蛋白表达检测 | 第31-32页 |
2.2.7 数据分析 | 第32页 |
2.3 结果与分析 | 第32-37页 |
2.3.1 AFM1和OTA单独及联合作用对分化Caco-2 细胞活性的影响 | 第32-33页 |
2.3.2 AFM1和OTA单独及联合作用对分化Caco-2 细胞凋亡的影响 | 第33-34页 |
2.3.3 AFM1和OTA单独及联合作用对分化Caco-2 细胞活性氧释放量的影响 | 第34-35页 |
2.3.4 AFM1和OTA单独及联合作用对分化Caco-2 细胞线粒体膜电位的影响 | 第35-36页 |
2.3.5 AFM1和OTA单独及联合作用对分化的Caco-2 细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第36-37页 |
2.4 讨论 | 第37页 |
2.5 小结 | 第37-40页 |
第3章 AFB1和AFM1对肠、肝、肾和神经细胞存活率的影响 | 第40-48页 |
3.1 材料与方法 | 第41页 |
3.1.1 实验材料 | 第41页 |
3.1.2 实验仪器 | 第41页 |
3.2 研究方法 | 第41-42页 |
3.2.1 细胞培养 | 第41页 |
3.2.2 细胞增殖抑制试验 | 第41-42页 |
3.2.3 统计分析 | 第42页 |
3.3 结果与分析 | 第42-45页 |
3.3.1 AFM1和AFB1对Caco-2 细胞存活率的影响 | 第42-43页 |
3.3.2 AFM1和AFB1对HEK 293T细胞存活率的影响 | 第43页 |
3.3.3 AFM1和AFB1对Hep-G2细胞存活率的影响 | 第43-44页 |
3.3.4 AFM1和AFB1对SK-N-SH细胞存活率的影响 | 第44-45页 |
3.4 讨论 | 第45-46页 |
3.5 小结 | 第46-48页 |
第4章 LF对肠、肝、肾和神经细胞毒性及抗氧化作用的影响 | 第48-56页 |
4.1 材料与方法 | 第48-49页 |
4.1.1 材料 | 第48页 |
4.1.2 实验仪器 | 第48-49页 |
4.2 研究方法 | 第49-50页 |
4.2.1 细胞培养 | 第49页 |
4.2.2 MTT比色法检测细胞增殖试验处理 | 第49页 |
4.2.3 细胞内LDH测定 | 第49页 |
4.2.4 抗氧化能力检测 | 第49页 |
4.2.5 统计分析 | 第49-50页 |
4.3 结果与分析 | 第50-54页 |
4.3.1 不同浓度LF对细胞存活率的影响 | 第50-51页 |
4.3.2 不同浓度LF对细胞LDH释放量的影响 | 第51-52页 |
4.3.3 不同浓度LF对细胞GSH释放量的影响 | 第52-53页 |
4.3.4 不同浓度LF对细胞SOD释放量的影响 | 第53-54页 |
4.4 讨论 | 第54页 |
4.5 小结 | 第54-56页 |
第5章 LF抑制AFM1和AFB1诱导的细胞氧化DNA损伤作用 | 第56-70页 |
5.1 材料与方法 | 第56-57页 |
5.1.1 实验材料 | 第56-57页 |
5.1.2 实验仪器 | 第57页 |
5.2 实验方法 | 第57-58页 |
5.2.1 细胞培养 | 第57页 |
5.2.2 MTT比色法检测细胞增殖试验处理 | 第57页 |
5.2.3 细胞内LDH测定 | 第57页 |
5.2.4 抗氧化能力检测 | 第57页 |
5.2.5 细胞DNA损伤测定 | 第57-58页 |
5.2.6 统计分析 | 第58页 |
5.3 结果与分析 | 第58-67页 |
5.3.1 LF抑制AFB1和AFM1诱导细胞存活率降低 | 第58-60页 |
5.3.2 LF抑制AFB1和AFM1诱导细胞LDH释放 | 第60-61页 |
5.3.3 细胞抗氧化能力检测 | 第61-63页 |
5.3.4 LF抑制AFB1和AFM1诱导细胞DNA损伤 | 第63-67页 |
5.4 讨论 | 第67-69页 |
5.5 小结 | 第69-70页 |
第6章 LF抑制AFM1和AFB1诱导的细胞氧化DNA损伤作用机制 | 第70-76页 |
6.1 材料与方法 | 第70页 |
6.1.1 实验材料 | 第70页 |
6.1.2 实验仪器 | 第70页 |
6.2 实验方法 | 第70-71页 |
6.2.1 细胞培养 | 第70-71页 |
6.2.2 Western blot试验 | 第71页 |
6.2.3 统计分析 | 第71页 |
6.3 结果与分析 | 第71-73页 |
6.3.1 LF抑制AFB1和AFM1激活MAPK相关蛋白 | 第71-73页 |
6.4 讨论 | 第73-74页 |
6.5 小结 | 第74-76页 |
第7章 结论 | 第76-78页 |
7.1 结论 | 第76页 |
7.2 创新点 | 第76-78页 |
参考文献 | 第78-90页 |
攻读硕士学位期间科研成果 | 第90-92页 |
致谢 | 第92页 |