| 致谢 | 第4-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-17页 |
| 1.1 选题背景 | 第10页 |
| 1.2 我国农业副产物综合利用现状 | 第10-12页 |
| 1.2.1 农业副产物概述 | 第10页 |
| 1.2.2 我国农业副产物利用现状 | 第10-12页 |
| 1.2.3 深入研究农业副产品综合利用技术的重大意义 | 第12页 |
| 1.3 葫芦科植物和冬瓜 | 第12-14页 |
| 1.3.1 抗氧化功能突出的葫芦科植物 | 第12-13页 |
| 1.3.2 日益受学者追捧的冬瓜及其副产物 | 第13-14页 |
| 1.4 本论文的研究内容和论文框架 | 第14-15页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第14-15页 |
| 1.4.2 论文框架 | 第15页 |
| 1.5 研究的目的与意义 | 第15-17页 |
| 第二章 不同处理条件对冬瓜皮营养成分与生物活性物质的影响 | 第17-29页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 材料与方法 | 第17-22页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第17-18页 |
| 2.2.1.1 主要材料 | 第17页 |
| 2.2.1.2 使用试剂 | 第17-18页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第18页 |
| 2.2.3 试验方法 | 第18-22页 |
| 2.2.3.1 实验材料的预处理 | 第18页 |
| 2.2.3.2 冬瓜皮（干、鲜样）水分、灰分、蛋白质、粗纤维的测定 | 第18页 |
| 2.2.3.3 冬瓜皮（干、鲜样）叶绿素的测定 | 第18-19页 |
| 2.2.3.4 冬瓜皮（干、鲜样）中总黄酮、总多酚的测定 | 第19-20页 |
| 2.2.3.5 不同干燥条件下冬瓜皮中总黄酮、总多酚、总三萜类物质的测定 | 第20-22页 |
| 2.2.4 数据处理 | 第22页 |
| 2.3 结果与分析 | 第22-28页 |
| 2.3.1 测得不同厚度的干、鲜冬瓜皮中水分、灰分、蛋白质、粗纤维含量 | 第22页 |
| 2.3.2 测得不同厚度的干、鲜冬瓜皮中叶绿素的含量 | 第22-23页 |
| 2.3.3 测得不同厚度的干、鲜冬瓜皮中总黄酮和总多酚的含量 | 第23页 |
| 2.3.4 不同干燥条件下水分比曲线对比 | 第23-25页 |
| 2.3.4.1 常压微波干燥水分比曲线 | 第23-24页 |
| 2.3.4.2 真空微波干燥水分比曲线 | 第24页 |
| 2.3.4.3 鼓风干燥水分比曲线 | 第24-25页 |
| 2.3.4.4 真空干燥水分比曲线 | 第25页 |
| 2.3.5 不同干燥方法对冬瓜皮中总黄酮、总多酚、总三萜的含量的影响 | 第25-28页 |
| 2.3.5.1 常压微波干燥对冬瓜皮活性物质的影响 | 第26页 |
| 2.3.5.2 真空微波干燥对冬瓜皮活性物质的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.5.3 鼓风干燥对冬瓜皮活性物质的影响 | 第27页 |
| 2.3.5.4 真空干燥对冬瓜皮活性物质的影响 | 第27-28页 |
| 2.4 结论与讨论 | 第28-29页 |
| 第三章 冬瓜皮中三萜类物质的提取工艺优化 | 第29-38页 |
| 3.1 引言 | 第29页 |
| 3.2 材料与方法 | 第29-32页 |
| 3.2.1 主要材料和试剂 | 第29-30页 |
| 3.2.2 主要仪器和设备 | 第30页 |
| 3.2.3 试验方法 | 第30-31页 |
| 3.2.3.1 样品的预处理 | 第30页 |
| 3.2.3.2 样品的提取 | 第30页 |
| 3.2.3.3 样品分离纯化 | 第30-31页 |
| 3.2.3.4 样品干物质的制备 | 第31页 |
| 3.2.3.5 样品含量测定 | 第31页 |
| 3.2.4 数据处理 | 第31-32页 |
| 3.3 结果与分析 | 第32-37页 |
| 3.3.1 标准曲线 | 第32页 |
| 3.3.2 不同条件对样品分离纯化效果的影响 | 第32-37页 |
| 3.3.2.1 不同流速对三萜分离纯化效果的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.2.2 不同样品浓度对三萜分离纯化的影响 | 第33-35页 |
| 3.3.2.3 不同洗脱剂对三萜分离纯化的影响 | 第35-37页 |
| 3.4 结论与讨论 | 第37-38页 |
| 第四章 冬瓜皮提取物的抗氧化活性研究 | 第38-47页 |
| 4.1 引言 | 第38页 |
| 4.2 材料与方法 | 第38-42页 |
| 4.2.1 主要实验材料与试剂 | 第38-39页 |
| 4.2.2 主要实验仪器与设备 | 第39页 |
| 4.2.3 试验方法 | 第39-42页 |
| 4.2.3.1 提取物的制备 | 第39-40页 |
| 4.2.3.2 待测液及实验溶液的制备 | 第40页 |
| 4.2.3.3 各萃取粗提物抗氧化活性的测定 | 第40-41页 |
| 4.2.3.4 薄层色谱法分析各萃取粗提物 | 第41页 |
| 4.2.3.5 GC-MS法分析各萃取粗提物 | 第41-42页 |
| 4.3 结果与分析 | 第42-46页 |
| 4.3.1 抗氧化活性测定结果 | 第42-43页 |
| 4.3.2 薄层色谱实验结果分析 | 第43-46页 |
| 4.3.2.1 7:3 的乙醇和石油醚作为展开剂分析效果图 | 第43-44页 |
| 4.3.2.2 4:1 比例的无水乙醇和石油醚作为展开剂氯仿和石油醚粗提物分析效果图 | 第44页 |
| 4.3.2.3 8:1:1 和 40:5:6 比例的甲醇、乙酸乙酯和正丁醇作为展开剂乙酸乙酯粗提物分析效果图 | 第44-45页 |
| 4.3.2.4 8:1:1 和 40:5:6 的比例的甲醇、乙酸乙酯和正丁醇作为展开剂正丁醇粗提物的分析效果图 | 第45-46页 |
| 4.3.3 GC–MS实验结果分析 | 第46页 |
| 4.4 结论与讨论 | 第46-47页 |
| 第五章冬瓜皮提取物的抑菌活性研究 | 第47-54页 |
| 5.1 引言 | 第47页 |
| 5.2 材料与方法 | 第47-50页 |
| 5.2.1 主要实验材料与试剂 | 第47-48页 |
| 5.2.2 主要仪器与设备 | 第48页 |
| 5.2.3 试验方法 | 第48-50页 |
| 5.2.3.1 待测液的制备 | 第48页 |
| 5.2.3.2 培养基的制备 | 第48页 |
| 5.2.3.3 菌种的活化 | 第48-49页 |
| 5.2.3.4 菌悬液的制备 | 第49页 |
| 5.2.3.5 生长速率法测定冬瓜皮提取物对8种真菌的抑菌活性 | 第49页 |
| 5.2.3.5 抑菌圈法测定冬瓜皮提取物对3种细菌抑菌活性 | 第49页 |
| 5.2.3.6 乙酸乙酯部位对3种真菌的最小抑菌浓度（MIC）的测定 | 第49-50页 |
| 5.2.3.7 冬瓜皮提取物乙酸乙酯部位抑菌成分耐热性试验 | 第50页 |
| 5.2.3.8 紫外辐照对冬瓜皮提取物乙酸乙酯部位抑菌活性的影响 | 第50页 |
| 5.2.3.9 抑菌或杀菌的初步探讨 | 第50页 |
| 5.3 数据处理方法 | 第50页 |
| 5.4 结果与分析 | 第50-53页 |
| 5.4.1 冬瓜皮提取物不同萃取部位对8种病原菌菌丝生长的抑制作用 | 第50-51页 |
| 5.4.2 瓜皮提取物乙酸乙脂部位对 3 种病原菌的最小抑菌浓度 | 第51页 |
| 5.4.3 冬瓜皮提取物不同萃取部位对 3 种细菌的生长的抑制作用 | 第51-52页 |
| 5.4.4 冬瓜皮提取物乙酸乙酯部位抑菌成分耐热性研究 | 第52页 |
| 5.4.5 紫外辐照对冬瓜皮提取物乙酸乙酯部位抑菌效力稳定性的影响 | 第52-53页 |
| 5.4.6 抑菌或杀菌机理的初步探讨 | 第53页 |
| 5.5 结论与讨论 | 第53-54页 |
| 第六章 总结与展望 | 第54-56页 |
| 6.1 全文总结 | 第54页 |
| 6.2 创新点与工作展望 | 第54-56页 |
| 6.2.1 创新点 | 第54-55页 |
| 6.2.2 工作展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| ABSTRACT | 第59-60页 |
