| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 第一章 引言 | 第14-25页 |
| 1.1 大黄鱼研究现状 | 第14-15页 |
| 1.2 食源性生物胺的研究现状 | 第15-20页 |
| 1.2.1 关注食源性生物胺的重要性 | 第15-16页 |
| 1.2.2 生物胺的形成 | 第16-18页 |
| 1.2.3 生物胺积累的影响因素 | 第18-19页 |
| 1.2.4 生物胺的控制及降解 | 第19页 |
| 1.2.5 生物胺的检测技术 | 第19-20页 |
| 1.3 波罗的海希瓦氏菌(Shewanella. baltica)的致腐特性 | 第20页 |
| 1.4 原核生物中的乙酰化修饰 | 第20-22页 |
| 1.4.1 乙酰化修饰反应机制 | 第21页 |
| 1.4.2 可逆乙酰化修饰的生物功能及研究进展 | 第21-22页 |
| 1.5 本课题研究的主要内容及意义 | 第22-25页 |
| 1.5.1 研究目的及意义 | 第22-23页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第23-24页 |
| 1.5.3 研究技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章 基于生物胺指标构建冷藏大黄鱼鲜度评价体系及生物胺来源的初步探究 | 第25-38页 |
| 2.1 前言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 实验对象 | 第25-26页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第27页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-35页 |
| 2.3.1 养殖大黄鱼冷藏条件下TVC变化情况 | 第30-31页 |
| 2.3.2 养殖大黄鱼冷藏条件下典型理化指标变化情况 | 第31-32页 |
| 2.3.3 养殖大黄鱼冷藏条件下生物胺变化情况 | 第32-33页 |
| 2.3.4 养殖大黄鱼主要生物胺与理化指标的回归模型构建 | 第33-34页 |
| 2.3.5 养殖大黄鱼冷藏条件下游离氨基酸变化情况 | 第34-35页 |
| 2.3.6 养殖大黄鱼生物胺与其前体物质游离氨基酸的相关性分析 | 第35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-38页 |
| 第三章 冷藏大黄鱼特定腐败菌S. baltica 73中腐胺产生通路及积累机制的探索 | 第38-61页 |
| 3.1 前言 | 第38-39页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第39-52页 |
| 3.2.1 实验对象 | 第39页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第40-41页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第41-52页 |
| 3.3 结果与分析 | 第52-58页 |
| 3.3.1 S.baltica 73中腐胺产生通路的探索 | 第52-53页 |
| 3.3.2 鸟氨酸对ODC体系相关基因表达的诱导调节作用 | 第53-54页 |
| 3.3.3 鸟氨酸诱导条件下S.baltica 73细胞内外的腐胺动态产生情况 | 第54-55页 |
| 3.3.4 腐胺对ODC体系相关基因表达的诱导调节作用 | 第55页 |
| 3.3.5 腐胺积累条件下S.baltica 73细胞内外的腐胺动态产生情况 | 第55-56页 |
| 3.3.6 缺失株△speF及△potE的构建 | 第56-57页 |
| 3.3.7 speF与potE基因对ODC体系相关基因表达的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.8 野生株、△speF、△potE细胞内外腐胺产量的动态对比 | 第58页 |
| 3.4 讨论 | 第58-60页 |
| 3.5 本章小结 | 第60-61页 |
| 第四章 环境pH对S.baltica 73腐胺消长调节的探索 | 第61-77页 |
| 4.1 前言 | 第61页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第61-71页 |
| 4.2.1 实验对象 | 第61-62页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第62-63页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第63-64页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第64-71页 |
| 4.3 结果与分析 | 第71-75页 |
| 4.3.1 载体质粒的构建 | 第71-72页 |
| 4.3.2 speF目的蛋白纯化 | 第72页 |
| 4.3.3 不同环境pH对ODC体系相关基因表达的诱导 | 第72-73页 |
| 4.3.4 不同环境培养下细菌胞内pH大小 | 第73-74页 |
| 4.3.5 不同pH条件下speF蛋白酶活性大小 | 第74页 |
| 4.3.6 不同环境pH条件下细菌腐胺产生量 | 第74-75页 |
| 4.4 讨论 | 第75-76页 |
| 4.5 本章小结 | 第76-77页 |
| 第五章 基于乙酰化修饰组学初探酶蛋白修饰对S. baltica 73中腐胺消长的调节作用 | 第77-90页 |
| 5.1 前言 | 第77页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第77-83页 |
| 5.2.1 实验对象 | 第77-78页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第78-79页 |
| 5.2.3 实验仪器 | 第79页 |
| 5.2.4 实验方法 | 第79-83页 |
| 5.3 结果与分析 | 第83-88页 |
| 5.3.1 质谱质控检测及修饰鉴定总览 | 第83-84页 |
| 5.3.2 S.baltica 73乙酰化修饰蛋白的富集及互作分析 | 第84-85页 |
| 5.3.3 S.baltica 73腐胺产生通路中的酶蛋白乙酰化修饰分析 | 第85-86页 |
| 5.3.4 S.baltica 73中高保守性乙酰转移酶及去乙酰化酶分析 | 第86页 |
| 5.3.5 缺失株△KAT及AKDAC的构建 | 第86-87页 |
| 5.3.6 乙酰化修饰对S.baltica 73中腐胺消长的潜在影响分析 | 第87-88页 |
| 5.4 讨论 | 第88页 |
| 5.5 本章小结 | 第88-90页 |
| 第六章 总结论、创新点及研究展望 | 第90-92页 |
| 6.1 总结论 | 第90页 |
| 6.2 创新点 | 第90-91页 |
| 6.3 研究展望 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-105页 |
| 附录一: 中英文对照 | 第105-108页 |
| 附录二: 乙酰转移酶和去乙酰化酶氨基酸序列比对图 | 第108-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
