| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 引言 | 第9-28页 |
| 1.1 红曲霉概述 | 第9-13页 |
| 1.1.1 红曲霉的分类及鉴定 | 第9-10页 |
| 1.1.2 红曲霉的理化特性 | 第10页 |
| 1.1.3 红曲霉的主要代谢产物 | 第10-13页 |
| 1.2 洛伐他汀 | 第13-17页 |
| 1.2.1 洛伐他汀的发现 | 第13页 |
| 1.2.2 洛伐他汀的理化性质和结构特征 | 第13-14页 |
| 1.2.3 洛伐他汀的生物合成途径及药效机理 | 第14-17页 |
| 1.2.4 洛伐他汀的其他功能 | 第17页 |
| 1.3 洛伐他汀产生菌的选育 | 第17-20页 |
| 1.3.1 传统诱变育种 | 第17-18页 |
| 1.3.2 原生质体融合育种 | 第18-19页 |
| 1.3.3 基因工程育种 | 第19页 |
| 1.3.4 基因组重排育种 | 第19-20页 |
| 1.4 发酵条件研究 | 第20-23页 |
| 1.4.1 液态发酵法 | 第21-22页 |
| 1.4.2 固态发酵法 | 第22-23页 |
| 1.5 洛伐他汀的分离纯化及检测方法 | 第23-26页 |
| 1.5.1 洛伐他汀的分离纯化 | 第23-25页 |
| 1.5.2 洛伐他汀的检测方法 | 第25-26页 |
| 1.6 洛伐他汀研究意义及前景 | 第26页 |
| 1.7 本课题的选题依据及主要研究内容 | 第26-28页 |
| 第二章 产洛伐他汀红曲菌的筛选及正突变库的建立 | 第28-49页 |
| 2.1 材料 | 第28-30页 |
| 2.1.1 原料 | 第28页 |
| 2.1.2 培养基 | 第28-29页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第29页 |
| 2.1.4 主要实验仪器 | 第29-30页 |
| 2.2 方法 | 第30-38页 |
| 2.2.1 红曲霉菌株的分离 | 第30页 |
| 2.2.2 红曲霉菌株的筛选 | 第30页 |
| 2.2.3 红曲霉菌株的鉴定 | 第30-33页 |
| 2.2.4 诱变方法 | 第33-34页 |
| 2.2.5 培养方法 | 第34-35页 |
| 2.2.6 测定方法 | 第35-38页 |
| 2.3 结果与分析 | 第38-47页 |
| 2.3.1 红曲霉菌株的分离 | 第38-39页 |
| 2.3.2 产洛伐他汀红曲菌株的筛选 | 第39-40页 |
| 2.3.3 菌株SH2-7的鉴定 | 第40-45页 |
| 2.3.4 紫外诱变 | 第45-46页 |
| 2.3.5 微波诱变 | 第46-47页 |
| 2.4 小结 | 第47-49页 |
| 第三章 红曲霉原生质体制备及再生条件研究 | 第49-57页 |
| 3.1 材料 | 第49-50页 |
| 3.1.1 菌种 | 第49页 |
| 3.1.2 培养基 | 第49页 |
| 3.1.3 缓冲液及主要试剂 | 第49-50页 |
| 3.1.4 主要仪器设备 | 第50页 |
| 3.2 方法 | 第50-51页 |
| 3.2.1 红曲霉原生质体的制备 | 第50页 |
| 3.2.2 原生质体的再生 | 第50-51页 |
| 3.3 结果与分析 | 第51-56页 |
| 3.3.1 酶液种类及浓度对红曲霉原生质体制备的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.2 红曲霉原生质体制备的最适菌龄 | 第52-53页 |
| 3.3.3 酶解时间对红曲霉原生质体制备的影响 | 第53页 |
| 3.3.4 酶解温度对红曲霉原生质体制备的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.5 缓冲液pH对红曲霉原生质体制备的影响 | 第54页 |
| 3.3.6 红曲霉原生质体再生培养基中渗透压稳定剂的选择 | 第54-55页 |
| 3.3.7 红曲霉原生质体的形态观察 | 第55-56页 |
| 3.4 小结 | 第56-57页 |
| 第四章 基因组重排技术选育洛伐他汀高产菌株 | 第57-70页 |
| 4.1 材料 | 第57-58页 |
| 4.1.1 菌种 | 第57页 |
| 4.1.2 培养基 | 第57页 |
| 4.1.3 药品与试剂 | 第57页 |
| 4.1.4 主要仪器设备 | 第57-58页 |
| 4.2 方法 | 第58-60页 |
| 4.2.1 原生质体的灭活 | 第58页 |
| 4.2.2 原生质体的融合 | 第58-59页 |
| 4.2.3 全基因组重排 | 第59页 |
| 4.2.4 融合子遗传稳定性研究 | 第59页 |
| 4.2.5 融合子与出发菌株的比较 | 第59-60页 |
| 4.3 结果与分析 | 第60-69页 |
| 4.3.1 原生质体灭活 | 第60-61页 |
| 4.3.2 原生质体融合条件研究 | 第61-64页 |
| 4.3.3 基因组重排技术选育高产菌株 | 第64-67页 |
| 4.3.4 融合子遗传稳定性研究 | 第67-68页 |
| 4.3.5 融合子与出发菌株的比较 | 第68-69页 |
| 4.4 小结 | 第69-70页 |
| 第五章 红曲霉产洛伐他汀的发酵工艺优化 | 第70-91页 |
| 5.1 材料 | 第70页 |
| 5.1.1 菌种 | 第70页 |
| 5.1.2 培养基 | 第70页 |
| 5.1.3 主要试剂 | 第70页 |
| 5.1.4 主要仪器设备 | 第70页 |
| 5.2 方法 | 第70-73页 |
| 5.2.1 洛伐他汀液态发酵工艺条件研究 | 第70-71页 |
| 5.2.2 固态发酵法 | 第71-72页 |
| 5.2.3 洛伐他汀固态发酵工艺条件研究 | 第72-73页 |
| 5.2.4 固态发酵产物中洛伐他汀含量测定方法 | 第73页 |
| 5.3 结果与分析 | 第73-90页 |
| 5.3.1 液态发酵 | 第73-82页 |
| 5.3.2 固态发酵 | 第82-90页 |
| 5.4 小结 | 第90-91页 |
| 第六章 红曲中洛伐他汀的分离纯化 | 第91-99页 |
| 6.1 材料与设备 | 第91页 |
| 6.1.1 材料 | 第91页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第91页 |
| 6.1.3 主要仪器设备 | 第91页 |
| 6.2 方法 | 第91-92页 |
| 6.2.1 红曲中洛伐他汀提取分离路线 | 第91-92页 |
| 6.2.2 洛伐他汀纯度检测 | 第92页 |
| 6.3 结果与分析 | 第92-96页 |
| 6.3.1 液态发酵产物中洛伐他汀的分离纯化 | 第92-95页 |
| 6.3.2 固态发酵产物中洛伐他汀的分离纯化 | 第95-96页 |
| 6.4 小结 | 第96-99页 |
| 结论与展望 | 第99-102页 |
| 结论 | 第99-101页 |
| 展望 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-109页 |
| 附录 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 个人简历 | 第111页 |