| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 引言 | 第14-23页 |
| 1.1 生物活性肽研究进展 | 第14-16页 |
| 1.1.1 生物活性肽 | 第14页 |
| 1.1.2 生物活性肽的分类 | 第14页 |
| 1.1.3 生物活性肽的功能 | 第14-16页 |
| 1.2 免疫活性肽研究进展 | 第16-19页 |
| 1.2.1 免疫活性肽 | 第17页 |
| 1.2.2 免疫活性肽的来源 | 第17-18页 |
| 1.2.3 免疫活性肽的分离纯化研究 | 第18-19页 |
| 1.3 炎症反应与免疫调节检测 | 第19-21页 |
| 1.3.1 炎症反应与致炎因子 | 第19-20页 |
| 1.3.2 炎症细胞与炎症介质 | 第20页 |
| 1.3.3 免疫活性检测 | 第20-21页 |
| 1.4 虾蛄的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.5 研究内容及意义 | 第22-23页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第22页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第22-23页 |
| 第二章 虾蛄的酶解工艺研究 | 第23-31页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.1 原料与试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.2 仪器 | 第24页 |
| 2.3 方法 | 第24-25页 |
| 2.3.1 原料处理 | 第24页 |
| 2.3.2 单因素试验探索酶解工艺条件 | 第24页 |
| 2.3.3 MTT试验 | 第24页 |
| 2.3.4 中性红法探索虾蛄多肽免疫调节活性 | 第24-25页 |
| 2.4 结果与分析 | 第25-29页 |
| 2.4.1 胰蛋白酶酶解虾蛄单因素实验 | 第25-27页 |
| 2.4.2 正交法优化虾蛄酶解工艺 | 第27-28页 |
| 2.4.3 虾蛄多肽免疫活性初步探索 | 第28-29页 |
| 2.5 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 虾蛄免疫活性多肽的制备工艺研究 | 第31-41页 |
| 3.1 引言 | 第31页 |
| 3.2 材料与方法 | 第31-34页 |
| 3.2.1 实验材料与仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.2 试验方法 | 第32-34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-39页 |
| 3.3.1 虾蛄多肽的膜分离 | 第34-37页 |
| 3.3.2 虾蛄酶解多肽的凝胶层析分离 | 第37页 |
| 3.3.3 组分OPS对巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第37页 |
| 3.3.4 虾蛄多肽的高效液相分离 | 第37-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-41页 |
| 第四章 虾蛄活性肽的免疫活性研究 | 第41-48页 |
| 4.1 引言 | 第41页 |
| 4.2 实验材料和方法 | 第41-43页 |
| 4.2.1 实验材料和试剂 | 第41-42页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第42页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第42-43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-46页 |
| 4.3.1 OPS对RAW264.7 生成i NOS、NO的影响 | 第43-45页 |
| 4.3.2 OPS对RAW264.7 生成TNF-α、IL-6 和IL-10 的影响 | 第45-46页 |
| 4.4 讨论 | 第46-48页 |
| 第五章 虾蛄活性肽胶囊制备及质量标准的初步建立 | 第48-53页 |
| 5.1 引言 | 第48页 |
| 5.2 实验仪器与材料 | 第48页 |
| 5.3 实验方法 | 第48-50页 |
| 5.3.1 处方组成 | 第48页 |
| 5.3.2 虾蛄免疫活性肽硬胶囊制备工艺 | 第48-49页 |
| 5.3.3 质量控制 | 第49-50页 |
| 5.4 结果与分析 | 第50-52页 |
| 5.4.1 水分测定结果 | 第50页 |
| 5.4.2 装量差异测定结果 | 第50页 |
| 5.4.3 崩解时限 | 第50-51页 |
| 5.4.4 微生物限度检查 | 第51-52页 |
| 5.5 讨论 | 第52-53页 |
| 第六章 结语与展望 | 第53-55页 |
| 6.1 结语 | 第53-54页 |
| 6.1.1 虾蛄免疫活性肽酶解工艺研究 | 第53页 |
| 6.1.2 虾蛄免疫活性肽的分离纯化 | 第53页 |
| 6.1.3 OPS的免疫活性测定及功能产品开发 | 第53-54页 |
| 6.2 展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 在读期间发表学术论文 | 第61页 |