| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 海参现状 | 第11-13页 |
| 1.1.1 海参概述 | 第11页 |
| 1.1.2 海参主要营养成分 | 第11-12页 |
| 1.1.3 海参加工技术研究进展 | 第12-13页 |
| 1.2 海参肽研究进展 | 第13-16页 |
| 1.2.1 海参肽制备工艺研究 | 第13页 |
| 1.2.2 海参肽分离纯化研究 | 第13-14页 |
| 1.2.3 海参肽功效 | 第14-16页 |
| 1.2.4 海参肽国内外研究现状 | 第16页 |
| 1.3 抗衰老研究现状 | 第16-20页 |
| 1.3.1 衰老概述 | 第16-17页 |
| 1.3.2 衰老机制的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3.3 抗衰老方法研究进展 | 第18-20页 |
| 1.4 研究意义和主要内容 | 第20-22页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第20页 |
| 1.4.2 主要内容 | 第20-22页 |
| 第二章 七种海参提取物酶法制备及其抗氧化活性研究 | 第22-38页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料与方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 原料 | 第22页 |
| 2.2.2 试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.3 设备 | 第23页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-36页 |
| 2.3.1 七种海参蛋白含量及泡发增重倍数 | 第25页 |
| 2.3.2 不同酶、酶解时间对7种海参提取物得率、蛋白回收率的影响 | 第25-30页 |
| 2.3.3 不同酶、酶解时间对7种海参提取物抗氧化活性的影响 | 第30-36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-38页 |
| 第三章 富肽叶瓜参提取物制备工艺优化及其稳定性研究 | 第38-51页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 材料与方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 原料 | 第38页 |
| 3.2.2 试剂 | 第38页 |
| 3.2.3 主要仪器及设备 | 第38-39页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-50页 |
| 3.3.1 叶瓜参提取物制备工艺优化 | 第41-45页 |
| 3.3.2 富肽海参提取物的稳定性研究 | 第45-48页 |
| 3.3.3 体外模拟胃肠道消化 | 第48-50页 |
| 3.4 本章结论 | 第50-51页 |
| 第四章 富肽叶瓜参提取物抗衰老活性的动物学评价 | 第51-69页 |
| 4.1 引言 | 第51页 |
| 4.2 材料与方法 | 第51-54页 |
| 4.2.1 材料和试剂 | 第51-52页 |
| 4.2.2 CFE的制备 | 第52页 |
| 4.2.3 CFE的化学成分测定 | 第52页 |
| 4.2.4 UPLC-QTOF-MS/MS鉴定CFE中多肽 | 第52页 |
| 4.2.5 果蝇种类及饮食 | 第52-53页 |
| 4.2.6 CFE对果蝇寿命的影响 | 第53页 |
| 4.2.7 D-半乳糖致衰小鼠及处理 | 第53页 |
| 4.2.8 Morris水迷宫实验 | 第53-54页 |
| 4.2.9 MDA当量、蛋白质羰基和巯基水平,以及SOD、GSH-Px和AchE活性的测定 | 第54页 |
| 4.2.10 Klotho水平测定 | 第54页 |
| 4.2.11 数据处理 | 第54页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第54-68页 |
| 4.3.1 UPLC-QTOF-MS/MS鉴定CFE肽谱 | 第54-58页 |
| 4.3.2 CFE延长果蝇寿命 | 第58页 |
| 4.3.3 CFE改善了D-半乳糖诱导的衰老小鼠的学习和记忆损伤 | 第58-60页 |
| 4.3.4 CFE改善脏器指数 | 第60页 |
| 4.3.5 CFE减弱D-半乳糖诱导的衰老小鼠的氧化应激 | 第60-67页 |
| 4.3.6 CFE调节D-半乳糖诱导的衰老小鼠的脑中的Klotho表达和AchE活性.. | 第67-68页 |
| 4.4 本章小结 | 第68-69页 |
| 结论与展望 | 第69-72页 |
| 1 结论 | 第69-70页 |
| 2 创新 | 第70页 |
| 3 展望 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-85页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第85-87页 |
| 致谢 | 第87-89页 |
| 附件 | 第89页 |
