摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
0 前言 | 第12-21页 |
0.1 岩藻聚糖硫酸酯结构研究进展 | 第12-14页 |
0.1.1 褐藻中岩藻聚糖硫酸酯结构研究 | 第12-14页 |
0.1.2 海参中岩藻聚糖硫酸酯结构研究 | 第14页 |
0.2 岩藻聚糖硫酸酯活性与其分子量间的构效关系研究 | 第14-15页 |
0.3 岩藻聚糖硫酸酯酶研究进展 | 第15-17页 |
0.4 人工神经网络模型 | 第17-19页 |
0.5 本文研究思路 | 第19-21页 |
第一章 岩藻聚糖硫酸酯酶酶活定量方法的建立 | 第21-32页 |
1.材料与仪器 | 第21-22页 |
1.1 材料 | 第21页 |
1.2 试剂 | 第21页 |
1.3 试剂配置 | 第21-22页 |
1.4 主要仪器设备 | 第22页 |
2.实验方法 | 第22-24页 |
2.1 Flavobacteriaceae sp.CZ1127 胞内酶获取 | 第22页 |
2.2 海地瓜岩藻聚糖硫酸酯的获取 | 第22页 |
2.3. pHBH 试剂显色测定岩藻糖还原端含量方法的建立 | 第22-24页 |
2.4 基于 pHBH 法的 FUCase 酶活测定方法的建立 | 第24页 |
3. 结果与讨论 | 第24-31页 |
3.1 pHBH 试剂显色测定岩藻糖含量方法的建立 | 第24-29页 |
3.2 基于 pHBH 法的岩藻聚糖硫酸酯酶酶活测定方法的建立 | 第29-31页 |
4.本章小结 | 第31-32页 |
第二章 岩藻聚糖硫酸酯酶的分离纯化及酶学性质研究 | 第32-48页 |
1.材料与仪器 | 第32-34页 |
1.1 试剂 | 第32页 |
1.2 试剂配置 | 第32-33页 |
1.3 主要仪器设备 | 第33-34页 |
2. 实验方法 | 第34-38页 |
2.1 CZ1127 胞内酶液获取 | 第34页 |
2.2 酶活定量方法 | 第34-35页 |
2.3 酶活定性方法 | 第35-36页 |
2.4 岩藻聚糖硫酸酯酶的分离纯化 | 第36-37页 |
2.5 SDS-PAGE 分析 | 第37页 |
2.6 岩藻聚糖硫酸酯酶酶学性质研究 | 第37-38页 |
3. 结果与讨论 | 第38-47页 |
3.1 岩藻聚糖硫酸酯酶的分离纯化 | 第38-42页 |
3.2 岩藻聚糖硫酸酯酶纯度鉴定及分子量测定 | 第42-43页 |
3.3 岩藻聚糖硫酸酯酶酶学性质研究 | 第43-47页 |
4.本章小结 | 第47-48页 |
第三章 硫酸酯酶酶学性质初析 | 第48-54页 |
1.材料与仪器 | 第48-49页 |
1.1 试剂 | 第48页 |
1.2 试剂配置 | 第48-49页 |
2. 实验方法 | 第49-50页 |
2.1 Flavobacteriaceae sp.CZ1127 胞内酶获取 | 第49页 |
2.2 酶活定性定量方法 | 第49页 |
2.3 硫酸酯酶的分离纯化 | 第49页 |
2.4 硫酸酯酶酶学性质初步研究 | 第49-50页 |
2.5 通过控制 pH 值特异消除硫酸酯酶酶活 | 第50页 |
3. 结果与讨论 | 第50-53页 |
3.1 硫酸酯酶的分离纯化 | 第50-51页 |
3.2 硫酸酯酶酶学性质初探 | 第51-53页 |
3.3 硫酸酯酶酶活特异性抑制方法的效果考察 | 第53页 |
4.本章小结 | 第53-54页 |
第四章 基于人工神经网络的岩藻聚糖硫酸酯可控酶解 | 第54-62页 |
1.材料与仪器 | 第54页 |
1.1 试剂 | 第54页 |
1.2 试剂配置 | 第54页 |
2. 实验方法 | 第54-55页 |
2.1 岩藻聚糖硫酸酯酶的制备 | 第54-55页 |
2.2 海地瓜岩藻聚糖硫酸酯制备 | 第55页 |
2.3 模型样本采集 | 第55页 |
2.4 海参岩藻聚糖硫酸酯酶解的人工神经网络模型建立并预测性能 | 第55页 |
3.实验结果与讨论 | 第55-61页 |
3.1 模型样本采集 | 第55-57页 |
3.2 建立海参岩藻聚糖硫酸酯酶解的人工神经网络模型并预测性能 | 第57-61页 |
4. 本章小结 | 第61-62页 |
总结与展望 | 第62-64页 |
本文创新点 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-74页 |
个人简历 | 第74页 |
发表的学术论文 | 第74-75页 |
致谢 | 第75-76页 |