| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第15-24页 |
| 1.1 茶多酚 | 第15-17页 |
| 1.1.1 茶多酚的结构特性 | 第15页 |
| 1.1.2 茶多酚的生理功效 | 第15-16页 |
| 1.1.3 茶多酚的生物利用率 | 第16-17页 |
| 1.2 淀粉的营养品质 | 第17-18页 |
| 1.2.1 淀粉消化与餐后血糖反应 | 第17-18页 |
| 1.2.2 慢消化淀粉 | 第18页 |
| 1.3 辛烯基琥珀酸淀粉酯淀粉 | 第18-20页 |
| 1.3.1 辛烯基琥珀酸淀粉酯淀粉概述 | 第18-20页 |
| 1.3.2 OSA淀粉生理特性 | 第20页 |
| 1.3.3 OSA淀粉的应用 | 第20页 |
| 1.4 功能因子载运体系 | 第20-21页 |
| 1.5 本课题的研究背景及意义 | 第21-22页 |
| 1.6 本课题的主要研究内容 | 第22-24页 |
| 第二章 慢消化性OSA淀粉的制备及鉴定 | 第24-35页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第24页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.3.1 主要试剂的配制 | 第25页 |
| 2.3.2 原料直链淀粉含量测定 | 第25-26页 |
| 2.3.3 辛烯基琥珀酸酯淀粉的制备 | 第26页 |
| 2.3.4 湿热处理 | 第26页 |
| 2.3.5 辛烯基琥珀酸淀粉酯理化性质测定 | 第26-27页 |
| 2.3.6 慢消化淀粉含量测定 | 第27-28页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第28-34页 |
| 2.4.1 OSA改性淀粉的取代度 | 第28页 |
| 2.4.2 OSA改性淀粉红外特性 | 第28-29页 |
| 2.4.3 OSA改性淀粉热力学特性及结晶性 | 第29-32页 |
| 2.4.4 OSA改性淀粉消化性 | 第32-34页 |
| 2.5 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 茶多酚-OSA淀粉复合体的制备 | 第35-49页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第35-36页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第35页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第35-36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-39页 |
| 3.3.1 OSA淀粉载运能力测定 | 第36页 |
| 3.3.2 茶多酚对OSA淀粉消化性影响 | 第36-37页 |
| 3.3.3 茶多酚对淀粉水解酶消化活性的影响 | 第37页 |
| 3.3.4 茶多酚对双酶催化活性的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.5 茶多酚-OSA淀粉复合体红外光谱分析 | 第38页 |
| 3.3.6 茶多酚-OSA淀粉复合体热力学特性测定 | 第38页 |
| 3.3.7 茶多酚-OSA淀粉复合体乳化性能测定 | 第38页 |
| 3.3.8 茶多酚-OSA淀粉复合体粒径分布测定 | 第38页 |
| 3.3.9 茶多酚-OSA淀粉复合体粘度测定 | 第38页 |
| 3.3.10 茶多酚-OSA淀粉复合体扫描电镜分析 | 第38-39页 |
| 3.3.11 数据处理与分析 | 第39页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第39-47页 |
| 3.4.1 茶多酚-OSA淀粉复合体物料比 | 第39-41页 |
| 3.4.2 茶多酚对 α-淀粉活性的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.3 茶多酚对淀粉葡萄糖苷酶活性的影响 | 第42-43页 |
| 3.4.4 茶多酚对双酶催化活性的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.5 茶多酚-OSA淀粉复合体复合体的理化性质 | 第44-47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 第四章 复合体中茶多酚的生物利用率 | 第49-64页 |
| 4.1 引言 | 第49-50页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第50页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第50页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第50页 |
| 4.3 实验方法 | 第50-55页 |
| 4.3.1 主要试剂配制 | 第50-51页 |
| 4.3.2 细胞的培养及生长曲线绘制 | 第51-52页 |
| 4.3.3 细胞单层模型的建立 | 第52页 |
| 4.3.4 细胞单层模型的验证 | 第52-53页 |
| 4.3.5 复合体中茶多酚的体外释放 | 第53-54页 |
| 4.3.6 跨膜双向转运实验 | 第54页 |
| 4.3.7 茶多酚的检测 | 第54页 |
| 4.3.8 血浆茶多酚提取与检测 | 第54-55页 |
| 4.3.9 数据处理与分析 | 第55页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第55-63页 |
| 4.4.1 细胞生长情况 | 第55页 |
| 4.4.2 细胞单层模型验证 | 第55-58页 |
| 4.4.3. 复合体体外消化稳定性 | 第58-60页 |
| 4.4.4 茶多酚细胞转运 | 第60-62页 |
| 4.4.5 儿茶素体内生物利用率 | 第62-63页 |
| 4.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 第五章 复合体对餐后血糖反应的影响 | 第64-77页 |
| 5.1 引言 | 第64页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第64页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第64页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第64页 |
| 5.3 实验方法 | 第64-67页 |
| 5.3.1 主要溶液的配制 | 第64-65页 |
| 5.3.2 动物喂养及处理 | 第65页 |
| 5.3.3 餐后血糖反应测定 | 第65页 |
| 5.3.4 血清胰岛素检测 | 第65-66页 |
| 5.3.6 小肠、肠内容物茶多酚提取与检测 | 第66页 |
| 5.3.7 茶多酚对α-淀粉酶及葡糖苷酶活性的影响 | 第66-67页 |
| 5.3.8 茶多酚对葡糖酶活性的抑制动力学研究 | 第67页 |
| 5.3.9 组织抗氧化活性测定 | 第67页 |
| 5.3.10 组织脂质过氧化产物测定 | 第67页 |
| 5.3.11 数据分析及处理 | 第67页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第67-76页 |
| 5.4.1 餐后血糖及胰岛素水平 | 第67-68页 |
| 5.4.2 复合体中儿茶素的肠道释放 | 第68-70页 |
| 5.4.5 小肠组织中淀粉消化酶活性 | 第70-72页 |
| 5.4.6 茶多酚对 α-淀粉酶及葡萄糖苷酶活性的影响 | 第72-74页 |
| 5.4.7 小鼠肠道氧化应激水平 | 第74-76页 |
| 5.5 本章小结 | 第76-77页 |
| 第六章 复合体对不同膳食环境下小鼠老化过程的影响 | 第77-102页 |
| 6.1 引言 | 第77-78页 |
| 6.2 实验材料与仪器 | 第78页 |
| 6.2.1 实验材料与试剂 | 第78页 |
| 6.2.2 主要仪器 | 第78页 |
| 6.3 实验方法 | 第78-84页 |
| 6.3.1 主要溶液的配制 | 第78-79页 |
| 6.3.2 饲料的制备 | 第79页 |
| 6.3.3 实验动物喂养 | 第79-80页 |
| 6.3.4 组织样品采集及处理 | 第80-81页 |
| 6.3.5 小鼠行为学检测 | 第81页 |
| 6.3.6 小鼠组织氧化应激水平 | 第81-82页 |
| 6.3.7 小鼠糖代谢水平测定 | 第82页 |
| 6.3.8 糖基化终产物和脂褐素水平检测 | 第82页 |
| 6.3.9 血脂含量测定 | 第82页 |
| 6.3.10 肝脏切片制备及染色 | 第82页 |
| 6.3.11 总RNA的提取及实时荧光定量PCR | 第82-84页 |
| 6.3.12 数据处理与分析 | 第84页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第84-101页 |
| 6.4.1 老化小鼠的生长情况 | 第84-89页 |
| 6.4.2 膳食干预对老化小鼠脂代谢的影响 | 第89-96页 |
| 6.4.3 膳食干预对小鼠糖基化的影响 | 第96-100页 |
| 6.4.4 膳食干预对促老化因子表达水平的影响 | 第100-101页 |
| 6.5 本章小结 | 第101-102页 |
| 主要结论与展望 | 第102-104页 |
| 主要结论 | 第102-103页 |
| 展望 | 第103-104页 |
| 论文主要创新点 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-118页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间成果清单 | 第118页 |
