摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 绪论 | 第9-18页 |
1.1 红缘拟层孔菌化学成分的研究现状 | 第9-10页 |
1.1.1 三萜类化合物 | 第9-10页 |
1.1.2 多糖类化合物 | 第10页 |
1.1.3 其他成分 | 第10页 |
1.2 红缘拟层孔菌药理活性的研究现状 | 第10-13页 |
1.2.1 抗肿瘤 | 第10-11页 |
1.2.2 抗氧化 | 第11-12页 |
1.2.3 免疫调节作用 | 第12页 |
1.2.4 辅助治疗糖尿病 | 第12-13页 |
1.2.5 保护肝脏的作用 | 第13页 |
1.2.6 抗炎镇痛、抗肥胖作用 | 第13页 |
1.2.7 其他药理活性 | 第13页 |
1.3 红缘拟层孔菌对聚乙烯醇的降解作用 | 第13-14页 |
1.4 红缘拟层孔菌对木质素和纤维素的降解作用 | 第14页 |
1.5 多糖的结构分析方法研究现状 | 第14-15页 |
1.5.1 多糖纯度鉴定方法 | 第14页 |
1.5.2 多糖分子量测定方法 | 第14页 |
1.5.3 多糖的一级结构检测方法 | 第14-15页 |
1.5.4 多糖的高级结构检测方法 | 第15页 |
1.6 红缘拟层孔菌多糖国内外研究进展 | 第15-16页 |
1.6.1 红缘拟层孔菌多糖的国外研究进展 | 第15-16页 |
1.6.2 红缘拟层孔菌多糖的国内研究进展 | 第16页 |
1.7 本课题立题依据和意义 | 第16页 |
1.8 本课题主要研究内容 | 第16-18页 |
2 材料和方法 | 第18-25页 |
2.1 材料和仪器 | 第18-19页 |
2.1.1 材料 | 第18页 |
2.1.2 仪器与设备 | 第18-19页 |
2.2 实验方法 | 第19-25页 |
2.2.1 红缘拟层孔菌子实体多糖提取 | 第19页 |
2.2.2 红缘拟层孔菌子实体多糖脱色脱蛋白 | 第19-20页 |
2.2.3 FPS分离纯化 | 第20页 |
2.2.4 FPS分离纯化后多糖级分的多糖含量和蛋白质含量的测定 | 第20页 |
2.2.5 高效体积排阻色谱(HPSEC)分析 | 第20-21页 |
2.2.6 各多糖级分体积排阻色谱和光散射仪联用(SEC-LLS)分析 | 第21页 |
2.2.7 红缘拟层孔菌多糖的单糖组成分析 | 第21-22页 |
2.2.8 各多糖级分的紫外光谱扫描 | 第22页 |
2.2.9 各多糖级分的红外光谱(IR)分析 | 第22页 |
2.2.10 各多糖级分的核磁共振(NMR)分析 | 第22页 |
2.2.11 红缘拟层孔菌多糖体外促进正常小鼠脾细胞、巨噬细胞增殖的MTT实验 | 第22-25页 |
3 结果与讨论 | 第25-44页 |
3.1 粗多糖的提取率及其多糖含量 | 第25页 |
3.2 粗多糖脱色脱蛋白得率及其多糖含量 | 第25页 |
3.3 FPS和FPJ的相对分子量分布及单糖组成 | 第25-28页 |
3.3.1 FPS和FPJ的相对分子量分布 | 第25-26页 |
3.3.2 FPS和FPJ的单糖组成分析结果 | 第26-28页 |
3.4 FPS和FPJ体外对正常小鼠脾淋巴细胞增殖作用的影响 | 第28页 |
3.5 FPS分离分级及各级分的纯度分析 | 第28-31页 |
3.5.1 DEAE-Sepharose Fast Flow柱分离分级 | 第28-29页 |
3.5.2 FPS1、FPS2经Sepharose CL-6B柱分离分级 | 第29-30页 |
3.5.3 各多糖级分的纯度分析 | 第30-31页 |
3.6 纯化多糖级分的结构表征 | 第31-40页 |
3.6.1 各多糖级分的单糖组成 | 第31-33页 |
3.6.2 各多糖级分的相对分子量分布 | 第33页 |
3.6.3 基于体积排阻色谱和激光光散射(SEC-LLS)分析多糖级分的构象特征 | 第33-34页 |
3.6.4 各多糖级分紫外及红外光谱特征 | 第34-36页 |
3.6.5 各多糖级分的核磁共振(NMR)分析 | 第36-40页 |
3.7 各多糖级分的免疫活性分析 | 第40-43页 |
3.7.1 各多糖级分体外对正常小鼠脾淋巴细胞增殖作用的影响 | 第40-41页 |
3.7.2 各多糖级分体外对正常小鼠巨噬细胞增殖作用的影响 | 第41-43页 |
3.8 小结 | 第43-44页 |
主要结论和展望 | 第44-46页 |
致谢 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-52页 |
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第52页 |