| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 水产动物内源性蛋白酶及其主导的自降解 | 第11-13页 |
| 1.1.1 水产动物内源性蛋白酶 | 第11-12页 |
| 1.1.2 內源酶主导的水产动物自降解 | 第12-13页 |
| 1.2 水产动物自降解与水产品品质 | 第13-14页 |
| 1.2.1 水产动物自降解与水产品风味 | 第13-14页 |
| 1.2.2 水产动物自降解与水产品质感 | 第14页 |
| 1.2.3 水产动物自降解与水产品腐败 | 第14页 |
| 1.3 水产动物自降解的影响因素 | 第14-15页 |
| 1.3.1 內源酶的种类和数量 | 第14页 |
| 1.3.2 內源酶的酶学性质 | 第14-15页 |
| 1.4 水产品自降解的调控 | 第15-16页 |
| 1.4.1 酶学调控 | 第15页 |
| 1.4.2 物理调控 | 第15页 |
| 1.4.3 化学调控 | 第15-16页 |
| 1.5 水产动物自降解的应用 | 第16-17页 |
| 1.5.1 蛋白质的回收利用 | 第16页 |
| 1.5.2 除去原料中蛋白质 | 第16页 |
| 1.5.3 生物活性物质的制备 | 第16-17页 |
| 1.6 虾头及其自降解作用 | 第17-18页 |
| 1.6.1 虾头的资源概况 | 第17页 |
| 1.6.2 虾头的结构特点和生化特性 | 第17页 |
| 1.6.3 虾头自降解研究进展 | 第17-18页 |
| 1.7 利用内源性消化蛋白酶自降解制备短肽 | 第18-19页 |
| 1.8 本课题的立项依据及目的意义 | 第19页 |
| 1.9 主要研究内容 | 第19-21页 |
| 2 UV-C胁迫对虾头内源性蛋白酶活性的影响 | 第21-34页 |
| 2.1 前言 | 第21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21-25页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第21页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第21页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第21-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-33页 |
| 2.3.1pH对UV-C胁迫前后内源性蛋白酶酶活的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.2 温度对UV-C胁迫前后内源性蛋白酶酶活的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.3 抑制剂对UV-C胁迫后内源性蛋白酶酶活的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.4 UV-C胁迫后内源性碱性蛋白酶硫酸铵分级沉淀曲线 | 第28-29页 |
| 2.3.5 UV-C胁迫前后内源性碱性蛋白酶的分子筛纯化 | 第29-31页 |
| 2.3.6 UV-C胁迫前后内源性酸性蛋白酶硫酸铵分级沉淀曲线 | 第31-32页 |
| 2.3.7 UV-C胁迫前后内源性酸性蛋白酶经分子筛纯化 | 第32-33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-34页 |
| 3 UV-C胁迫后虾头的自降解规律 | 第34-44页 |
| 3.1 前言 | 第34页 |
| 3.2 材料与方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第34页 |
| 3.2.2 实验仪器与设备 | 第34-35页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第35-36页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第36-43页 |
| 3.3.1 UV-C胁迫下自降解动力学的建立 | 第36-38页 |
| 3.3.2 理化性质对自降解速率的影响 | 第38-40页 |
| 3.3.3 自降解动力学验证 | 第40-41页 |
| 3.3.4 UV-C胁迫后虾头自降解产物分子量分布 | 第41-42页 |
| 3.3.5 虾头自降解游离氨基酸释放规律 | 第42-43页 |
| 3.4 本章小结 | 第43-44页 |
| 4 基于内源性消化蛋白酶自降解制备短肽体系的构建 | 第44-53页 |
| 4.1 前言 | 第44页 |
| 4.2 材料与方法 | 第44-46页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第44页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第44页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第44-46页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第46-52页 |
| 4.3.1 基于虾头内源性酸性蛋白酶自降解 | 第46-49页 |
| 4.3.2 利用虾头内源性消化蛋白酶自降解制备短肽 | 第49-52页 |
| 4.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 5 基于内源性消化蛋白酶自降解短肽的功能特性及对其吸收转运的影响 | 第53-64页 |
| 5.1 前言 | 第53页 |
| 5.2 材料与方法 | 第53-56页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第53页 |
| 5.2.2 实验仪器与设备 | 第53页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第53-56页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第56-63页 |
| 5.3.1 自降解短肽的溶解性 | 第56-57页 |
| 5.3.2 不同分子量区间短肽的氨基酸分析 | 第57-58页 |
| 5.3.3 自降解制备短肽抗人体消化实验 | 第58-59页 |
| 5.3.4 细胞转运模型的建立 | 第59页 |
| 5.3.5 短肽在Caco-2 细胞中转运吸收的情况 | 第59-61页 |
| 5.3.6 短肽进行细胞吸收转运前后对比 | 第61-63页 |
| 5.4 本章小结 | 第63-64页 |
| 6 结论与展望 | 第64-66页 |
| 6.1 本文的主要结论 | 第64-65页 |
| 6.2 论文的主要创新点 | 第65页 |
| 6.3 展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 作者简介 | 第78-79页 |
| 导师简介 | 第79页 |
