摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-8页 |
第一章 绪论 | 第8-14页 |
·腈纶的表面改性方法 | 第8-9页 |
·物理改性 | 第8页 |
·化学改性 | 第8页 |
·生物酶改性 | 第8-9页 |
·腈水合酶概述 | 第9-12页 |
·腈水合酶的来源 | 第9页 |
·腈水合酶的酶学性质 | 第9-10页 |
·腈水合酶基因的克隆表达 | 第10页 |
·腈水合酶的发酵制备 | 第10-11页 |
·腈水合酶应用于腈纶纤维表面改性的研究进展 | 第11-12页 |
·立题依据及意义 | 第12页 |
·本论文的主要研究内容 | 第12-14页 |
第二章 实验材料与方法 | 第14-24页 |
·实验材料 | 第14-15页 |
·菌种 | 第14页 |
·主要试剂 | 第14页 |
·主要仪器 | 第14-15页 |
·培养方法 | 第15-16页 |
·培养基 | 第15页 |
·种子培养 | 第15-16页 |
·摇瓶发酵 | 第16页 |
·腈纶纤维的酶改性处理工艺 | 第16-17页 |
·腈水合酶的处理工艺 | 第16页 |
·角质酶与腈水合酶复配处理工艺 | 第16-17页 |
·分子生物学操作 | 第17-20页 |
·C. nitrilophilus 总DNA 的提取 | 第17页 |
·腈水合酶基因的扩增 | 第17-18页 |
·PCR 产物回收 | 第18-19页 |
·载体连接 | 第19页 |
·大肠杆菌化转感受态细胞的制备及转化 | 第19-20页 |
·重组质粒的筛选及鉴定 | 第20页 |
·分析方法 | 第20-24页 |
·菌体生物量的测定 | 第20页 |
·腈水合酶酶活的测定 | 第20-21页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)检测表达产物 | 第21页 |
·腈纶纤维毛细管效应的测定 | 第21页 |
·腈纶纤维的染色工艺及染色效果的测定 | 第21-22页 |
·酸碱滴定 | 第22页 |
·扫描电子显微镜测试 | 第22页 |
·傅立叶衰减全反射红外光谱(FT-IR ATR)测定 | 第22-24页 |
第三章 结果与讨论 | 第24-48页 |
·C.nitrilophilus 腈水合酶的摇瓶发酵优化 | 第24-33页 |
·C.nitrilophilus 种龄的选择 | 第24-25页 |
·发酵培养基的优化 | 第25-31页 |
·发酵条件的优化 | 第31-33页 |
·C.nitrilophilus 腈水合酶应用于腈纶纤维表面改性的影响因素探究 | 第33-38页 |
·处理温度的影响 | 第34页 |
·处理pH 的影响 | 第34-35页 |
·酶处理时间的影响 | 第35页 |
·摇床转速的影响 | 第35-36页 |
·酶浓度的影响 | 第36-37页 |
·有机溶剂预处理的影响 | 第37-38页 |
·腈水合酶与角质酶复配对腈纶改性效果的影响 | 第38-42页 |
·复合酶对腈纶纤维润湿性的影响 | 第38-39页 |
·复合酶对腈纶纤维染色性能的影响 | 第39页 |
·复合酶对酶解产物量的影响 | 第39-40页 |
·复合酶对纤维表皮层化学成分的影响 | 第40-41页 |
·复合酶对纤维表面形态变化的影响 | 第41-42页 |
·C.nitrilophilus 腈水合酶基因的克隆表达 | 第42-48页 |
·C.nitrilophilus 染色体DNA 的提取 | 第42-43页 |
·C.nitrilophilus 腈水合酶基因的克隆 | 第43-46页 |
·C.nitrilophilus 腈水合酶基因表达载体的构建 | 第46-47页 |
·腈水合酶的诱导表达 | 第47-48页 |
第四章 结论与展望 | 第48-50页 |
·结论 | 第48页 |
·展望 | 第48-50页 |
致谢 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-56页 |
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第56页 |