| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第9页 |
| 1.2 天然色素的研究概况 | 第9-13页 |
| 1.2.1 天然色素与纺织 | 第9-10页 |
| 1.2.2 天然色素的分类 | 第10-11页 |
| 1.2.3 天然色素染色方法 | 第11-12页 |
| 1.2.4 微生物天然色素培养基条件优化 | 第12页 |
| 1.2.5 天然色素存在的问题 | 第12-13页 |
| 1.3 天然色素提取与分离方法 | 第13-16页 |
| 1.3.1 天然色素提取方法 | 第13-14页 |
| 1.3.2 天然色素分离方法 | 第14-16页 |
| 1.4 链霉菌 | 第16-19页 |
| 1.4.1 链霉菌的分布及特性 | 第16-17页 |
| 1.4.2 链霉菌形态学 | 第17页 |
| 1.4.3 链霉菌功能性 | 第17-18页 |
| 1.4.4 链霉菌应用 | 第18-19页 |
| 1.5 论文研究的目的、意义和研究内容 | 第19-22页 |
| 1.5.1 研究意义 | 第19页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第19-20页 |
| 1.5.3 实验技术路线 | 第20-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 菌种 | 第22页 |
| 2.1.2 培养基 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验药品及试剂 | 第23页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第23-24页 |
| 2.2 试验方法 | 第24-31页 |
| 2.2.1 培养基的制备 | 第24页 |
| 2.2.2 链霉菌培养和灰霉病菌菌液的制备 | 第24-25页 |
| 2.2.3 链霉菌色素的鉴定与分离 | 第25-29页 |
| 2.2.4 色素的理化性质 | 第29-31页 |
| 2.3 链霉菌TD-1培养基优化 | 第31页 |
| 2.3.1 不同碳源对色素的影响 | 第31页 |
| 2.3.2 不同氮源对色素的影响 | 第31页 |
| 2.3.3 无机盐对色素的影响 | 第31页 |
| 2.4 链霉菌色素印染条件探究 | 第31-33页 |
| 2.4.1 链霉菌TD-1色素的染色性能 | 第31页 |
| 2.4.2 S.alboflavus色素染羊毛织物工艺探索 | 第31-33页 |
| 3 结果与讨论 | 第33-57页 |
| 3.1 链霉菌色素的鉴定 | 第33-34页 |
| 3.1.1 培养特征 | 第33页 |
| 3.1.2 链霉菌生长规律 | 第33-34页 |
| 3.2 不同溶剂提取链霉菌TD-1条件优化 | 第34-40页 |
| 3.2.1 提取方法的选择 | 第34-35页 |
| 3.2.2 料液比对链霉菌TD-1次级代谢产物的影响 | 第35页 |
| 3.2.3 超声时间对链霉菌TD-1次级代谢产物的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.4 提取次数对链霉菌TD-1次级代谢产物影响 | 第36-37页 |
| 3.2.5 Box-Behnken实验 | 第37-40页 |
| 3.3 链霉菌TD-1色素的鉴定 | 第40-57页 |
| 3.3.1 薄层层析 | 第40-41页 |
| 3.3.2 硅胶柱层析 | 第41-42页 |
| 3.3.3 高速逆流鉴定链霉菌组分 | 第42-44页 |
| 3.3.4 色素的理化性质 | 第44-47页 |
| 3.3.5 链霉菌TD-1培养基优化 | 第47-50页 |
| 3.3.6 S.alboflavus色素染羊毛织物工艺探索 | 第50-57页 |
| 4 结论 | 第57-58页 |
| 5 展望 | 第58-59页 |
| 6 参考文献 | 第59-67页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第67-68页 |
| 8 致谢 | 第68页 |
