| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 符号说明 | 第11-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-31页 |
| ·β_2-受体激动剂的化学结构 | 第13-14页 |
| ·β_2-受体激动剂的作用机理及毒副作用 | 第14-16页 |
| ·β_2-受体激动剂与临床医学 | 第14页 |
| ·β_2-受体激动剂与畜牧兽药 | 第14-15页 |
| ·β_2-受体激动剂与体育兴奋剂 | 第15-16页 |
| ·β_2-受体激动剂的样品前处理方法 | 第16-21页 |
| ·样品的水解 | 第16-17页 |
| ·样品的提取 | 第17页 |
| ·样品的净化 | 第17-21页 |
| ·液液萃取(LLE) | 第17-18页 |
| ·固相萃取(SPE) | 第18-19页 |
| ·免疫亲和色谱(IAC) | 第19页 |
| ·分子印迹固相萃取(MISPE) | 第19-20页 |
| ·基体分散固相萃取(MSPD) | 第20页 |
| ·超临界流体萃取(SFE) | 第20-21页 |
| ·β_2-受体激动剂的残留检测方法 | 第21-28页 |
| ·色谱分析方法 | 第21-24页 |
| ·气相色谱质谱联用法 | 第21-22页 |
| ·高效液相色谱方法(HPLC) | 第22-23页 |
| ·液相色谱质谱联用方法 | 第23-24页 |
| ·毛细管电泳 | 第24页 |
| ·免疫分析方法 | 第24-28页 |
| ·胶体金免疫层析法(GICA) | 第24-25页 |
| ·酶联免疫分析法(ELISA) | 第25-26页 |
| ·放射免疫分析法(RIA) | 第26页 |
| ·化学发光酶免疫 | 第26页 |
| ·时间分辨荧光免疫方法(TRFIA) | 第26-27页 |
| ·免疫生物传感器 | 第27-28页 |
| ·本课题研究的目的和意义 | 第28-31页 |
| 第二章 猪肉中β_2-受体激动剂残留UPLC-ESI-MS/MS检测方法研究 | 第31-41页 |
| ·前言 | 第31页 |
| ·实验材料和方法 | 第31-33页 |
| ·仪器和试剂 | 第31-32页 |
| ·样品处理 | 第32页 |
| ·色谱条件 | 第32-33页 |
| ·质谱条件 | 第33页 |
| ·结果与讨论 | 第33-40页 |
| ·酶解条件的优化 | 第34页 |
| ·提取条件优化 | 第34页 |
| ·净化条件的优化 | 第34-35页 |
| ·质谱条件优化 | 第35页 |
| ·母离子的选择及优化 | 第35页 |
| ·子离子的选择及优化 | 第35页 |
| ·色谱条件优化 | 第35-38页 |
| ·色谱柱的选择 | 第35-37页 |
| ·流动相的选择 | 第37页 |
| ·分析时间的设定 | 第37-38页 |
| ·流量的选择 | 第38页 |
| ·基质效应分析 | 第38页 |
| ·方法线性范围,检测限,定量限 | 第38-39页 |
| ·回收率和精密度 | 第39-40页 |
| ·实际样品检测 | 第40页 |
| ·小结 | 第40-41页 |
| 第三章 利用表面等离子体共振免疫生物传感器检测猪肉中的莱克多巴胺 | 第41-53页 |
| ·前言 | 第41页 |
| ·实验材料和方法 | 第41-43页 |
| ·仪器和试剂 | 第42页 |
| ·样品处理 | 第42页 |
| ·SPR生物传感器芯片的制备及莱克多巴胺衍生物的固定 | 第42-43页 |
| ·生物传感器检测 | 第43页 |
| ·结果与讨论 | 第43-51页 |
| ·抗体的特异性 | 第43-44页 |
| ·SPR生物传感器检测方法的优化 | 第44-45页 |
| ·再生条件的选择 | 第45-46页 |
| ·SPR方法工作曲线的确定 | 第46-47页 |
| ·SPR方法的灵敏度 | 第47页 |
| ·SPR方法的的回收率及精密度 | 第47-48页 |
| ·SPR生物传感器和UPLC-MS/MS比较 | 第48-50页 |
| ·与国外相关文献比较 | 第50-51页 |
| ·小结 | 第51-53页 |
| 第四章 结论 | 第53-55页 |
| ·研究成果 | 第53-54页 |
| ·问题和展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文和专利目录 | 第75-76页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第76页 |
