| 中文摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 中文文摘 | 第7-14页 |
| 绪论 | 第14-26页 |
| 第一节 ω-3多不饱和脂肪酸的概述 | 第14-16页 |
| 1.1 ω-3多不饱和脂肪酸的组成 | 第14页 |
| 1.2 ω-3多不饱和脂肪酸的生理功能 | 第14-15页 |
| 1.3 ω-3多不饱和脂肪酸的合成途径 | 第15-16页 |
| 第二节 二十二碳六烯酸(DHA)的概述 | 第16-21页 |
| 2.1 DHA的结构和性质 | 第16-17页 |
| 2.2 DHA的来源 | 第17-18页 |
| 2.2.1 鱼油提取DHA | 第17页 |
| 2.2.2 微藻中获得DHA | 第17页 |
| 2.2.3 真菌发酵产DHA | 第17-18页 |
| 2.3 DHA的生理功能 | 第18页 |
| 2.4 DHA的应用 | 第18-20页 |
| 2.4.1 医药保健用品 | 第18-19页 |
| 2.4.2 食品工业 | 第19-20页 |
| 2.4.3 饲料工业 | 第20页 |
| 2.5 国内外关于DHA的研究进展 | 第20-21页 |
| 第三节 裂殖壶菌细胞破碎技术概况 | 第21-24页 |
| 3.1 裂殖壶菌细胞破碎技术 | 第21-23页 |
| 3.1.1 机械方法破碎 | 第21-22页 |
| 3.1.2 化学方法破碎 | 第22-23页 |
| 3.1.3 生物法破碎 | 第23页 |
| 3.2 裂殖壶菌细胞破碎技术存在的问题和展望 | 第23-24页 |
| 第四节 选题的意义和研究内容 | 第24-26页 |
| 4.1 选题的意义 | 第24-25页 |
| 4.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 第一章 裂殖壶菌发酵培养基摇瓶优化 | 第26-40页 |
| 第一节 材料与方法 | 第26-31页 |
| 1.1 材料 | 第26-28页 |
| 1.1.1 菌种 | 第26页 |
| 1.1.2 培养基 | 第26页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第26-27页 |
| 1.1.4 实验仪器 | 第27-28页 |
| 1.2 方法 | 第28-31页 |
| 1.2.1 培养方法 | 第28页 |
| 1.2.2 实验方法 | 第28-31页 |
| 第二节 结果与分析 | 第31-37页 |
| 2.1 碳氮源单因素实验优化结果 | 第31-34页 |
| 2.2 碳氮源正交实验优化结果 | 第34-35页 |
| 2.3 无机盐均匀设计实验优化结果 | 第35-37页 |
| 第三节 小结与讨论 | 第37-40页 |
| 第二章 氮源限制和温度胁迫对裂殖壶菌发酵的影响 | 第40-49页 |
| 第一节 材料与方法 | 第40-42页 |
| 1.1 材料 | 第40-41页 |
| 1.1.1 菌种 | 第40页 |
| 1.1.2 培养基 | 第40页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第40页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第40-41页 |
| 1.2 方法 | 第41-42页 |
| 1.2.1 培养方法 | 第41页 |
| 1.2.2 实验方法 | 第41-42页 |
| 第二节 结果与分析 | 第42-47页 |
| 2.1 氮源限制对裂殖壶菌发酵影响的结果 | 第42-43页 |
| 2.2 不同限氮时间对裂殖壶菌发酵影响的结果 | 第43-44页 |
| 2.3 温度对裂殖壶菌发酵影响的结果 | 第44-45页 |
| 2.4 分阶段控温对裂殖壶菌发酵的影响 | 第45-47页 |
| 2.5 限氮条件下二阶段控温对裂殖壶菌发酵的影响 | 第47页 |
| 第三节 小结与讨论 | 第47-49页 |
| 第三章 裂殖壶菌高密度培养流加工艺的研究 | 第49-64页 |
| 第一节 材料与方法 | 第49-52页 |
| 1.1 材料 | 第49-50页 |
| 1.1.1 菌种 | 第49页 |
| 1.1.2 培养基 | 第49-50页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第50页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第50页 |
| 1.2 方法 | 第50-52页 |
| 1.2.1 培养方法 | 第50-51页 |
| 1.2.2 实验方法 | 第51-52页 |
| 第二节 结果与分析 | 第52-62页 |
| 2.1 不同培养时间对发酵影响结果 | 第52-54页 |
| 2.2 裂殖壶菌高密度培养流加工艺的研究结果 | 第54-62页 |
| 第三节 小结与讨论 | 第62-64页 |
| 第四章 裂殖壶菌细胞破壁工艺的研究 | 第64-72页 |
| 第一节 材料与方法 | 第64-65页 |
| 1.1 材料 | 第64页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第64页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第64页 |
| 1.2 方法 | 第64-65页 |
| 1.2.1 裂殖壶菌的培养 | 第64-65页 |
| 1.2.2 裂殖壶菌细胞破碎方法 | 第65页 |
| 1.2.3 油脂提取方法 | 第65页 |
| 1.2.4 脂肪酸组成分析 | 第65页 |
| 第二节 结果与分析 | 第65-71页 |
| 2.1 不同均质压力下酶处理对裂殖壶菌细胞破碎的影响 | 第65-66页 |
| 2.2 酶解条件的单因素实验 | 第66-69页 |
| 2.2.1 酶解温度的影响 | 第66-67页 |
| 2.2.2 酶解pH的影响 | 第67-68页 |
| 2.2.3 酶解时间的影响 | 第68页 |
| 2.2.4 酶用量的影响 | 第68-69页 |
| 2.3 酶解条件的正交实验 | 第69-71页 |
| 第三节 小结与讨论 | 第71-72页 |
| 第五章 结论与展望 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84-86页 |
| 个人简历 | 第86-88页 |