| 中文摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第1章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 活性氧简述 | 第11-21页 |
| 1.1.1 活性氧的产生和性质 | 第11-14页 |
| 1.1.2 活性氧对机体的危害 | 第14-16页 |
| 1.1.3 活性氧的清除 | 第16-17页 |
| 1.1.4 活性氧的检测 | 第17-21页 |
| 1.2 活性氧及细胞损伤 | 第21-22页 |
| 1.3 生物电化学传感器 | 第22-24页 |
| 1.3.1 生物电化学传感器的发展 | 第22-23页 |
| 1.3.2 生物电化学传感器的应用 | 第23页 |
| 1.3.3 生物电化学传感器的发展趋势 | 第23-24页 |
| 1.4 本论文的选题依据及研究思路 | 第24-27页 |
| 第2章 超氧阴离子和一氧化氮参与小分子抑制剂威罗菲尼对黑色素瘤细胞的杀伤 | 第27-39页 |
| 2.1 引言 | 第27-28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-31页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第28页 |
| 2.2.2 仪器 | 第28页 |
| 2.2.3 细胞生长能力与毒性实验 | 第28-29页 |
| 2.2.4 电化学传感器检测O_2~(·-)和NO水平 | 第29-30页 |
| 2.2.5 细胞氧化应激与线粒体膜电位的荧光分析 | 第30页 |
| 2.2.6 统计分析 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-38页 |
| 2.3.1 PLX4032诱导的细胞生长抑制 | 第31页 |
| 2.3.2 电化学传感器监测A375和MV3细胞时O_2~(·-)和NO的释放 | 第31-35页 |
| 2.3.3 荧光法检测细胞内O_2~(·-)和NO水平 | 第35-36页 |
| 2.3.4 O_2~(·-)和NO水平的上升与PLX4032诱导细胞的氧化损伤的关系 | 第36-38页 |
| 2.4 结论 | 第38-39页 |
| 第3章 生育酚和圣草酚对抗紫外光辐照引起细胞损伤的机理 | 第39-53页 |
| 3.1 引言 | 第39-40页 |
| 3.2 实验部分 | 第40-43页 |
| 3.2.1 试剂 | 第40页 |
| 3.2.2 装置 | 第40-41页 |
| 3.2.3 电化学检测细胞释放的O_2~(·-) | 第41-42页 |
| 3.2.4 超氧阴离子自由基荧光染色 | 第42页 |
| 3.2.5 细胞生存能力实验 | 第42-43页 |
| 3.2.6 统计学分析 | 第43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-52页 |
| 3.3.1 非标记电化学传感器量化紫外光诱导黑色素瘤细胞产生的O_2~(·-) | 第43-44页 |
| 3.3.2 HaCaT和A375细胞在紫外光照射下的生长能力 | 第44-45页 |
| 3.3.3 生育酚可以减少紫外线诱导黑色素瘤细胞产生的O2_2~(·-) | 第45-48页 |
| 3.3.4 电化学传感器预测生育酚在细胞成活能力中的保护作用 | 第48-50页 |
| 3.3.5 对紫外线诱导细胞氧化损伤时不同检测方法比较 | 第50-52页 |
| 3.4 结论 | 第52-53页 |
| 第4章 主要结论、创新点及研究展望 | 第53-55页 |
| 4.1 主要结论 | 第53页 |
| 4.1.1 研究了超氧阴离子和一氧化氮参与小分子抑制剂威罗菲尼对黑色素瘤细胞的杀伤 | 第53页 |
| 4.1.2 明确了生育酚和圣草酚对抗紫外光辐照引起细胞损伤的机理 | 第53页 |
| 4.2 创新点 | 第53-54页 |
| 4.3 研究展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-69页 |
| 发表论文与科研成果 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
